Hvilke konsekvenser skal en BLAST melding ha for laboratoriet?

Transkript

1 Hvilke konsekvenser skal en BLAST melding ha for laboratoriet? 1

2 Rutiner for oppfølging/rapportering ved BLAST-meldinger Sykehus A Sykehus B Sykehus C Sykehus D Sykehus E Sykehus F BLASTmelding skal genere utstryk, unntatt ved kjent pasient og prøve fra hematologisk avd. 1-2 utstryk/dag vurderes av lege MBK Totalt prøver/dag Ved blastflagg på Sysmex holdes WBC og DIFF tilbake, analyseres på ADVIA, hvis BLAST >5%, LUC > 4 %, vurdering på Cellavision Ca. 5 utstryk/dag Totalt 1000 prøver/dag Interne pas: BLASTmelding, rapporteres og rekvirent må selv følge opp. PHT: gir melding til rekvirent, får evt hematolog til å vurdere utstryk Få utstryk vurderes av hematolog prøver/dag til DIFF Alle prøver med BLASTmelding vurderes visuelt i første omgang på Cellavision, evt mikroskop utstryk/dag Totalt prøver/dag Ved BLASTmelding rapporteres mulig umodne celler (CellDyn). evt vurderes av hematolog. ADVIA: > 5% BLAST vurderes av lege MBK BLAST: Rapporteres at utstryk er laget på laboratoriet. Hvis kjent pas lages ikke utstryk og blast rapporteres. 1-3 prøver/dag 2-3 prøver/dag. Dato Antall utstryk Blast - regel

3 Prøver med morfmeldinger (%): Totalt antall talte prøver før emm = Totalt antall talte prøver etter emm = Etter emm Etter emm Etter emm Etter emm Etter emm Totalt antall prøver som det er laget utstryk på Totalt antall prøver som det er laget utstryk på Blasts? Blasts? Atyp Lymph? Atyp Lymph? Abn Ly/L- Blasts? Abn Ly/L- Blasts? IG Present (> 5%)/ Imm gram IG Present (> 5%)/ Imm gram RBC- Fragmenter? 4,3 4,3 0,88 0,44 0,57 0,33 0,8 0,89 1 1,18 0,45 Sykehistorie: 17 år gammel jente som fikk diagnosen MDS (myelodysplastisk syndrom) for 6 md. siden. Hun har vært slapp i lengre tid, og oppsøker lege pga. feber og smerte ved vannlating. Prøven sendes til sykehuslaboratoriet for analyse. Det er rekvirert leukocytter, diff og trombocytter. 3

4 ABX Advia Cell-Dyn Sysmex CELLAVISIONautomatisert DIFF-100 celler (reklassifisert manuelt) LPK 8,5 8,0 8,2 8,1 NEUT 1,08 (12,8 %) 1,79 (22,5 %) 1,51 (18,5 %) 0,11 (1,3 %) 15,8 % LYMF 1,77 (20,9 %) 0,93 (11,7 %) 0,94 (11,5 %) 1,08 (13,4 %) 12,1 % MONO 5,20 (61,4 %) - (26,20 %) 5,71 (69,9 %) 4,25 (52,5 %) 57,9 % EOS 0,02 (0,2 %) 0,01 (0,2 %) 0,01 (0,13 %) 0 % 0 % BASO 0,4 (4,7 %) - (0,90 %) 0 % 0,03 (0,4 %) 0 % LUC - (38,60 %) PLT ,4 42 Flagg Blasts Neutropenia Monocytosis Large Immature cells Basophilia Platelet aggregates Anemia Trombocytopenia ATYP Blasts HC-Var Hyper WBC Band Blasts IG Neutropenia Monocytosis Trombocytopenia WBC ABN SCG NRBC Present Blasts Immature Gran Atypical Ly Anemia Trombocytopenia Blaster : 14 % Av 15,8 % neutrofile er: 2,8 % myelocytter 2,8 %metamyelocytter 0,9 % stavkjernede 9,3 % segmenterte Finner 3,7 kjerneholdige røde pr. 100 leukocytter 4

5 endret til at alle IG Present > 2% rapporteres med angivelse av prosentandel IG. Det gjøres ikke manuell diff Noen få myelocytter. 1 4 Plateaggregater. 3 2 Venstreforskyvning opp til myelocyttnivå. 4 0 Betydlig toksisk granulering. 3 Toksisk granulering Sett en og annen myelocytt. 1 Venstreforskyvning samt noe toksisk granulering. 5 Noen myelocytter. Sett noen få atypiske lymfocytter med vakuoler i cytoplasma, rund kjerne. 1 Noe variabel platestørrelse. Aniso- poikiloytose. Noe polykromasi. 4 Aniso - poikilocytose (ovale dråper, blyanter) Noen myelocytter. 4 Noen erytroblaster. Noe polykromasi. Noen få myelocytter. 1 Aktiverte/atypiske lymfocytter. 10 Noen få erytroblaster. (Noe) venstreforkyvning. Sett en blastlignende celle. 4 Noen fragmenterte erytrocytter. Noe venstreforskyvning samt noe Dölie-bodies. 4 Noen få meta - myelocytter. 1 Toksisk granulering. Noe venstreforskyvning. 3 Noen myelocytter. 3 Noen virocytter. Lett venstreforskyvning. 0 Noen få myelocytter (Elin). En del aktiverte lymfocytter. Sett en blastlignende celle. Sett en myelocytt (Siri). 3 Noe venstreforskyvning. 7 Noe venstreforskyvning. 1 Noe venstreforskyvning. 2 Noe makrocytose samt litt hypersegmentering. Noen få myelocytter (Elin). Sett ett par myelocytter Noe aktiverte mononukleære celler. (Siri) 2 (Noe) toksisk granulering. Noe venstreforskyvning. 2 Noe venstreforskyvning. 2 Noen myelo- metamyelocytter (Elin). Noe aktiverte lymfocytter. Sett 1 NRBC (Siri). 1 Noe polykromasi. Noe toksisk granulering. Noen få virocytter (Elin). Noen lett aktiverte lymfocytter (Siri). 5 Noe toksisk granulering/vakuolisering. Noe venstreforskyvning. Noen få erytroblaster (plateaggregater) (Elin). Toksisk granulering (Siri). 7 Venstreforskyvning opp til myelocyttnivå. Toksisk granulering. (OBS: diffscatter på begge innkjøringene.) 2 Venstreforskyvning. Noe Döhlie-bodies. 1 Noen myelo-metamyelocytter. 1 Noen virocytter (plasmacellelignende celler). 4 Noe venstreforskyvning. 2 Noe venstreforskyvning samt toksisk granulering. 2 Lett venstreforskyvning. 5 Toksisk granulering/vakuolisering (Elin). Sett ett par metamyelocytter (Siri). 6 Targetceller, aniso-poikilocytose, toksisk granulering, variabel platestørrelse, noen myelocytter. 0 Noe toksisk granulering. 6 Toksisk granulering. 2 Sett en og annen metamyelocytt. Atypiske lymfocytter, noen aktiverte. 2 3 Betydelig kromasi. Betydelig anisocytose. Noen få erytroblaster. Lett venstreforskyvning. 1 Noen myelo-metamyelocytter. 1 Noe toksisk granulering. Lett venstreforskyvning 3 Noe toksisk granulering. Lett venstreforskyvning. 3 Erytroblaster: 1/100 WBC.bør jeg ha dårlig samvittighet? 5

6 Rapportering om mulig forekomst av umodne granulocytter (v/ig-flagg) Antall prøver med resultater med IG flagg ble vurdert i forhold til manuell vurdering av utstryk og NCCLS protokoll so beskrive patologi. CELL-DYN ADVIA Coulter Sysmex Sensitivitet 86* 74 52* 81 Spesifisitet *p<0.001 Kang SH et al. Int J Lab Hematol 2007 CRP IG WBC Neutro Level of CRP, WBC, Neutro and IG during a normal postoperative course (N=11) and during a postoperative course with infection( N=11). The means and SDs are given. Husby K et al

7 Hvor god er instrumentene til å -telle/karakterisere celler i prøver med morfologisk normale celler -påvise morfologisk patologi Sammenligning av CELL-DYN, ADVIA, Coulter og Sysmex 400 prøver fra pasienter, 100 normale prøver Karakterisering/klassifisering av celler i 5-part diff Morfologisk klassifisering (påvisning av patologiske celler). Rapportering av flagg. Rapportering av hver enkelt flagg (blaster, IG, atypiske lymfocytter osv) i forhold til manuell vurdering av utstryk Kang SH et al. Int J Lab Hematol

8 Karakterisering/klassifisering av celler i 5-part diff Antall prøver med resultater utenfor og innenfor referanseområdet ble sammenlignet med manuell telling. Hvis en av populasjonene var utenfor referanseområdet ble det oppfattet som patologi. CELL-DYN ADVIA Coulter Sysmex Sensitivitet Spesifisitet Kang SH et al. Int J Lab Hematol 2007 Rapportering av BLAST Antall prøver med resultater med BLAST flagg ble vurdert i forhold til manuell vurdering av utstryk og NCCLS protokoll som beskrive patologi. CELL-DYN ADVIA Coulter Sysmex(2100) Sensitivitet 77 59* 64 91* Spesifisitet XE ** 62** *p=0.016 **Eilertsen et al Am J Pathol 2013 Kang SH et al. Int J Lab Hematol

9 Hvor mye kan vi stole på instrumentene når det gjelder påvisning av morfologisk patologi? Ett eller flere instrumenter rapporterte BLAST i 208 prøver Det var overenstemmelse mellom de tre instrumentene for 128 prøver ROC for BLAST-melding basert på q-values Eilertsen H et al

10 Diskusjon Hvilke tilstander ønsker vi å oppdage? Hvilke flagg bør vi følge opp? Bør vi i større grad overlate ansvaret for rekvirering av blodutstryk til rekvirenten Forskjellige regler for innlagt/ikke innlagt? 10