Oppgave 3: Enzymkinetikk for β-galaktosidase



Like dokumenter
Oppgave 1 Ved hydrolyse kan disakkaridet sukrose bli spaltet til monosakkaridene glukose og fruktose.

TBT4135 Biopolymerkjemi Laboratorieoppgave 3: Syrehydrolyse av mannuronan Gruppe 5

Katalase substratkonsentrasjon og reaksjonshastighet

Sikkerhetsrisiko:lav. fare for øyeskade. HMS ruoner

Kinetic studies using UV-VIS spectroscopy Fenton reaction

TBT4135 Biopolymerkjemi Laboratorieoppgave 2: Nedbryting av biopolymerer undersøkt med viskometri Gruppe 5

Oppgave 4: Fermentering av karbohydrater og identifisering av disakkaridhydrolaser i gjær

Flervalgsoppgaver: Enzymer

b) Beregn varmemengden som blir frigitt hvis metangassen fra a) forbrennes. Anta at reakjonen går isotermt og isobart ved 1 atm og 298K: (5p) Figur 1

Enzymes make the world go around. Enzymer i dagliglivet

EKSAMENSOPPGAVE. Eksamen i: Kje-1005 Termodynamikk og Kinetikk Dato: Torsdag 6.juni 2013 Tid: Kl 09:00 14:00 Sted: Teorifagbygget, hus 1, plan 3

Oppgave 1. Bestemmelse av partielle molare volum

2T kapittel 3 Modellering og bevis Løsninger til innlæringsoppgavene

Laboratorieoppgave 3: Fordampingsentalpi til sykloheksan

KJ1042 Termodynamikk laboratoriekurs Oppgave 1. Partielle molare volum

KJ2053 Kromatografi Oppgave 5: Bestemmelse av molekylmasser ved hjelp av eksklusjonskromatografi/gelfiltrering (SEC) Rapport

Oppgave 3. Fordampningsentalpi av ren væske

EKSAMENSOPPGAVE. KJE-1001 Introduksjon til kjemi og kjemisk biologi

Vi ønsker å bestemme konsentrasjonen av to forskjellige spesier som begge absorberer. Ni 510

KJ1042 Termodynamikk laboratoriekurs Oppgave 3. Fordampningsentalpi av ren væske Aceton

FORSØK I OPTIKK. Forsøk 1: Bestemmelse av brytningsindeks

Lab forelesning. C-vitamin. Enzymer i hverdagen

TBT4135 Biopolymerkjemi Laboratorieoppgave 4: Analyse av løselighet og utfelling Gruppe 5

Løsninger til innlæringsoppgavene

BIOKJEMI MED BIOTEKNOLOGI

Oppgave 2. Bestemmelse av partielle molare entalpier

Varmekapasitet, og einsteintemperatur til aluminium

Teknostart Prosjekt. August, Gina, Jakob, Siv-Marie & Yvonne. Uke 33-34

KJ1042 Termodynamikk laboratoriekurs Oppgave 2. Partiell molar entalpi

4.4 Syre-basetitrering vi måler [H3O + ] og [OH ] i en løsning

EKSAMENSOPPGAVE I KJE-1001

MA0002 Brukerkurs i matematikk B Vår 2013

EKSAMENSOPPGAVE. Vil det bli gått oppklaringsrunde i eksamenslokalet? Svar: JA Hvis JA: ca. kl. 10:00 og kl. 12:30

Kap 4. Typer av kjemiske reaksjoner og løsningsstøkiometri

P (v) = 4π( M W 2πRT ) 3 2 v 2 e Mv 2 2RT

Oppgave 3 -Motstand, kondensator og spole

EKSAMENSOPPGAVE. Eksamen i: Kje-6003 Dato: Tirsdag 10. desember 2013 Tid: Kl 09:00 13:00 Sted: Åsgårdsveien. Tillatte hjelpemidler: Kalkulator,

EKSAMENSOPPGAVE. Eksamen i: KJE Organisk kjemi og analytisk kjemi for lærere. notater (begge sider), kalkulator

Hvordan temperatur påvirker reaksjonshastigheten til knekklys

Prosjektoppgave i FYS-MEK 1110

Løsningsforslag. og B =

TKP4105/TKP4110 Fentonoksidasjon Rapport

Rapporter. De ulike delene i en rapport og hvordan de bør utformes Sammendrag Teori Eksperimentelt Resultat Diskusjon/konklusjon Litteraturliste

EKSAMENSOPPGAVE. Kalkulator «Huskelapp» -A4 ark med skrift på begge sider. Enkel norsk-engelsk/engelsk-norsk ordbok

Funksjoner S1, Prøve 1 løsning

BIOS 2 Biologi

TKP4110 Kjemisk reaksjonsteknikk Biodieselproduksjon i batch-reaktor

3. Massevirkningsloven eller likevektsuttrykk for en likevekt

VEDLEGG : Grunnkurs vindforhold

Kapittel 9 Syrer og baser

Experiment Norwegian (Norway) Hoppende frø - En modell for faseoverganger og ustabilitet (10 poeng)

ph kurs teori og praksis

EKSAMENSOPPGAVE. Adm. bygget B154. Enkel lommeregner. Rute. Dr. Maarten Beerepoot

Basisoppgaver til 1P kap. 5 Funksjoner

2P eksamen våren 2016 løsningsforslag

TKP4105/TKP4110 Fentonoksidasjon Arbeidsplan

AVDELING FOR INGENIØRUTDANNING

Eksamen VG1340 Matematikk 1MX Privatistar/Privatister. Nynorsk/Bokmål

Enkel matematikk for økonomer. Del 1 nødvendig bakgrunn. Parenteser og brøker

Løsningsforslag til Eksamen 2P vår 2008

Om tilpasning av funksjoner til observerte dataer

Alkener fra alkoholer: Syntese av sykloheksan

Del 2: Alle hjelpemidler er tillatt, med unntak av Internett og andre verktøy som tillater kommunikasjon.

Eksamen. Emnekode: KJEMI1/FAD110. Emnenavn: Kjemi 1. Dato: Tid (fra-til): Tillatte hjelpemidler: Kalkulator, KjemiData.

FLERVALGSOPPGAVER ANALYSE

ARBEIDSBESKRIVELSE Institutt for husdyr-og akvakulturvitenskap, NMBU

Høgskolen i Oslo og Akershus. a) Finn den deriverte av disse funksjonene: b) Finn disse ubestemte integralene: c) Finn disse bestemte integralene:

Fargens innvirkning på fotosyntesen

Løsningsforslag, Øving 10 MA0001 Brukerkurs i Matematikk A

EKSAMENSOPPGAVE. Kalkulator «Huskelapp» -A4 ark med skrift på begge sider Enkel norsk-engelsk/engelsk-norsk ordbok

Del 2: Alle hjelpemidler er tillatt, med unntak av Internett og andre verktøy som tillater kommunikasjon.

Universitetet i Oslo

2P-Y eksamen våren 2016 løsningsforslag

FLERVALGSOPPGAVER SYRER OG BASER

KJ1042 Øving 12: Elektrolyttløsninger

Eksamen høsten 2016 Løsninger

EKSAMEN Løsningsforslag

eksamensoppgaver.org x = x = x lg(10) = lg(350) x = lg(350) 5 x x + 1 > 0 Avfortegnsskjemaetkanvileseatulikhetenstemmerfor

Løsning eksamen 1T våren 2010

DEL 1. Uten hjelpemidler. Oppgave 1 (2 poeng) Oppgave 2 (4 poeng) Oppgave 3 (4 poeng) I er en konstant. Deriver funksjonene

UNIVERSITETET I OSLO

Som vanlig er enkelte oppgaver kopiert fra tidligere års løsningsforslag. Derfor kan notasjon, språk og stil variere noe fra oppgave til oppgave.

Øving 1 TMA Grunnleggende dataanalyse i Matlab

EKSAMENSOPPGAVE. - Ett A4 ark med selvskrevne notater (begge sider) - Kalkulator. - Molekylbyggesett. Rute

Ekstraksjon: Separasjon av sure, basiske og nøytrale forbindelser

~ høgskolen i oslo. Emne: Biokjemi. Emnekode: SO 461 K Faglig veileder: Ragnhild Augustson. Pruppe(r): 2K. Dato: Antall oppgaver: 4

Utvalgte løsninger oppgavesamlingen

Løsningsforslag for MAT-0001, desember 2009, UiT

Eksamen IRF30014, høsten 15 i Matematikk 3 Løsningsforslag

Eksamen i KJM-MENA3300 våren 2016

Grafer og funksjoner

år i alder x i tid y i i=1 (x i x) 2 = 60, 9

Universitetet i Oslo FYS Labøvelse 1. Skrevet av: Sindre Rannem Bilden Kristian Haug

Øving 1 TMA Grunnleggende dataanalyse i Matlab

Tidsbesparende tilstandskontroll av lensepumper i Brattsberg kraftverk: Kan en enkel nivåmåler si noe om tilstanden? Viggo Pedersen - NTNU

Løsningsforslag heldagsprøve våren T

Eksamen REA3026 S1, Våren 2012

5 Matematiske modeller

Funksjoner S2 Oppgaver

Prosjekt 2 - Introduksjon til Vitenskapelige Beregninger

Transkript:

TBT412 Biokjemi 2 Oppgave 3: Enzymkinetikk for β-galaktosidase Gruppe 2 Katrine Bringe, Lene Brattsti Dypås og Ove Øyås NTNU, 29. februar 212

Innhold Sammendrag 3 1. Teori 3 1.1. β-galaktosidase................................ 3 1.2. Enzymkinetikk................................ 3 1.3. Enzymaktivitet som funksjon av temperatur og ph............ 5 2. Eksperimentelt 6 3. Resultater 6 3.1. K M og V max for β-galaktosidase....................... 6 3.2. Temperatureffekt for β-galaktosidase.................... 9 3.3. ph-optimum for β-galaktosidase....................... 9 4. Diskusjon 1 5. Konklusjon 11 A. Bestemmelse av K M og V max for β-galaktosidase 13 B. Bestemmelse av temperatureffekt for β-galaktosidase 18 C. Bestemmelse av ph-optimum for β-galaktosidase 19 D. B-spørsmål 25 2

Sammendrag I dette forsøket ble enzymkinetikken til β-galaktosidase fra Echirichia coli, stamme K12, undersøkt. ONPG ble brukt som substrat og enzymaktiviteten ble målt ved forskjellige temperaturer, ph og substratkonsentrasjoner. Temperatur- og ph-optimum, og parameterene K M (Michaelis-Menten-konstanten) og V max (maksimal intitiell reaksjonshastighet) ble bestemt. Temperaturoptimum ble funnet til å være 4 C og ph-optimum ble funnet til å være 7,4. Beregnet verdi for K M ble ca.,22 µmol/ml og beregnet verdi for V max ble ca.,75 µmol/min. 1. Teori 1.1. β-galaktosidase All teori er hentet fra kursheftet [1]. Enzymet som brukes i denne oppgaven er β-galaktosidase, et enzym som katalyserer hydrolyse av β-galaktosider. Menneskers analog til dette enzymet er laktase, som katalyserer spalting av β-galaktosidet laktose. I forsøket brukes β-galaktosidet o-nitrophenyl-β- D-galaktopyranoside (ONPG). Ved hydrolyse med β-galaktosidase blir ONPG spaltet til galaktose og o-nitro-phenol (ONP). ONP omdannes til en kromofor slik at mengden kan måles ved spektrofotometri. Figur 1.1.1 viser reaksjonsligningen for hydrolyse av ONPG. Figur 1.1: β-galaktosidase-katalysert hydrolyse av ONPG til galaktose og ONP. 1.2. Enzymkinetikk Michaelis-Menten-ligningen er gitt i ligning (1.1) og gir sammenhengen mellom initiell reaksjonshastighet, V, og substratkonsentrasjonen, [S]. V = V max[s] k 1 + [S] = V max[s] K M + [S] k 2 +k 1 (1.1) 3

Ligningen bruker initiell reaksjonshastighet fordi mengden substrat vil endre seg etter hvert som reaksjonen går og slik påvirke hastigheten. Helt i starten derimot, er substratmengden kjent. I ligning (1.1) er k 1, k 1, og k 2 hastighetskonstanter for reaksjonen i ligning (1.2). V max er maksimal initiell reaksjonshastighet. Denne hastigheten inntreffer når enzymet er fullstendig mette med substrat, slik at det ikke kan jobbe raskere. K M kalles Michaelis- Menten-konstanten og er substratkonsentrasjonen som gir halvparten av den maksimale initielle reaksjonshastigheten. Figur 1.2 viser et plot for Michaelis-Menten ligningen, hvor initiell reaksjonshastighet er plottet som en funksjon av substratkonsentrasjonen. Figur 1.2: Initiell reaksjonshastighet plottet som funksjon av substratkonsentrasjon. Grafen er gjeldende for enzym-katalyserte reaksjoner som følger Michaelis-Menten ligningen. En forutsetning for Michaelis-Menten-ligningen er at katalysereaksjonen følger ligning (1.2). Enzym (E) og substrat (S) danner først et enzym-substrat kompleks (ES), som så omdannes til produkt (P) og fritt enzym: E + S k 1 ES k 2 E + P (1.2) k 1 En annen forutsetning er at systemet er ved steady-state, hvor konsentrasjonen av ES er konstant. Det er også antatt at det hastighetsbestemmende steget er reaksjonen fra ES-komplekset til produkt og fritt enzym. Omskriving av Michaelis-Menten ligningen gir den på former som gjør det lettere å bestemme V max og K M grafisk. Ligning (1.3) gir en lineær utgave som kalles et Lineweaver- Burk plott. 1 = 1 + K M 1 (1.3) V V max V max [S] Et plott av 1/V som funksjon av 1/[S] vil gi en lineær graf som skjærer y-aksen i 1/V max og har stigningstall lik den negative verdien av 1/K M. Figur 1.3a viser et Lineweaver- Burk-plott. En annen mulighet er å bruke et Eadie-Hofstee-plott. Ligningen for dette plottet er funnet ved å multiplisere ligning (1.3) med V V max : V = V max K MV [S] (1.4) 4

(a) (b) Figur 1.3: (a) Lineweaver-Burk-plott og (b) Eadia-Hofstee-plott for grafisk bestemmelse av V max og K M Et plott av V som funksjon av V /[S] gir en lineær graf som skjærer y-aksen i V max og har stigningstall lik den negative verdien av K M. Et Eadie-Hofstee-plott er vist i Figur 1.3b. 1.3. Enzymaktivitet som funksjon av temperatur og ph Temperaturens innvirkning på enzymaktiviteten avhenger av blant annet ph, buffersystem og substratkonsentrasjon. I hovedsak vil økende temperatur øke enzymaktiviteten, opp til en bestemt temperatur. Dette skyldes at økende temperatur fører til at substrat kolliderer med aktivt sete på enzymet oftere [2], og flere substratmolekyler blir omdannet til produkt per tidsenhet. Ved en bestemt temperatur vil enzymet begynne å denatureres, slik at den totale aktiviteten nedsettes. Denatureringen skyldes at de svake interaksjonene som opprettholder enzymets tertiærstruktur brytes. Det temperaturområdet hvor den maksimale reaksjonshastigheten oppnås, kalles enzymets optimumtemperatur. Et eksempel på temperaturens innvirkning på enzymets aktivitet er vist i Figur 1.4. Figur 1.4: Enzymaktivitet som funksjon av temperatur. De fleste enzymer har et ph-optimum, hvor enzymaktiviteten er høyest. Virkningen av ph avhenger av hvilket enzym det er snakk om, og av reaksjonsbetingelsene. ph virker 5

Figur 1.5: Innvirkning av ph på enzymene (a) trypsin og (b) cholinesterase. inn på ioniseringen av enzymet, noe som kan endre de ioniske bindingene som er med på å bestemme enzymets tertiærstruktur [3]. ph-optimum er ofte i det fysiologiske området. Innvikrning av ph på enzymene trypsin og cholinesterase er vist i Figur 1.5. 2. Eksperimentelt Forsøket ble utført som beskrevet i kursheftet [1] med unntak av at utdelt enzymløsning ble fortynnet 1:25 i destillert vann. 3. Resultater 3.1. K M og V max for β-galaktosidase Initiell reaksjonshastighet, V, ble bestemt fra absorbansmålinger for fem ulike ONPGkonsentrasjoner ved hjelp av dataprogrammet Reaction Kinetics. Et Michaelis-Mentenplott av initiell reaksjonshastighet mot substratkonsentrasjon er vist i Figur 3.1. I Figur 3.2 og Figur 3.3 vises henholdsvis Lineweaver-Burk- og Eadie-Holstee-plott basert på målte data for enzymkinetikk. Verdier for K M og V max ble bestemt fra Lineweaver-Burk- og Eadie-Hofstee-plottene og er oppgitt i Tabell 3.1. Tabell 3.1: Verdier for K M og V max funnet fra Lineweaver-Burk- og Eadie-Hofstee-plott. Metode K M [µmol/ml] V max [µmol/min] Lineweaver-Burk,2256,2112 Eadie-Hofstee,2168,261 Gjennomsnitt,2212,287 6

,12,1,8 V [µmol/min],6,4,2,5,1,15,2,25,3,35 [S] [µmol/ml] Figur 3.1: Michaelis-Menten-plott av initiell reaksjonshastighet, V, mot substratkonsentrasjon, [S], med interpolert kurve. 3 25 2 1/V [min/µmol] 15 1 5 5 1 1 5 5 1 15 2 1/[S] [ml/µmol] Figur 3.2: Lineweaver-Burk-plott. 1/[S] er plottet mot 1/V og kurve funnet ved lineær regresjon. 7

,25,2,15 V [µmol/min],1,5,5,1,2,2,4,6,8 1 1,2 V /[S] [ml/min] Figur 3.3: Eadie-Hofstee-plott. V /[S] er plottet mot V og kurve funnet ved lineær regresjon.,6,4,2 V [µmol/min],12,1,8,6.18 µmol/min.19 µmol/min,4.2 µmol/min.21 µmol/min,2.22 µmol/min.23 µmol/min.24 µmol/min,5,1,15,2,25,3,35 [S] [µmol/ml] Figur 3.4: Michaelis-Menten-kurver for K M =, 2212 µmol/ml og ulike verdier av V max. Michaelis-Menten-kurve basert på målte data er også inkludert for sammenligning. Michaelis-Menten-kurver beregnet ved innsetting av ulike verdier av V max i ligning (1.1) viste godt samsvar mellom Michaelis-Menten-kurven som ble framstilt fra målte data og en kurve med V max =, 21 µmol/min. Dette er vist i Figur 3.4. Gjennomsnittsverdien for K M gitt i Tabell 3.1 ble benyttet i framstillingen av samtlige kurver. 8

3.2. Temperatureffekt for β-galaktosidase Absorbans ved 42 nm ble målt for syv ulike temperaturer med fast konsentrasjon av ONPG. Dette ga en sammenheng mellom enzymaktivitet og temperatur. Temperaturavhengighet for enzymaktiviteten til β-galaktosidase er vist i et plott av absorbans ved 42 nm mot reaksjonstemperatur i Figur 3.5..12.1 Absorbans, 42 nm.8.6.4.2 1 2 3 4 5 6 7 Figur 3.5: Plott av absorbans ved 42 nm mot reaksjonstemperatur, T, med kurve bestemt ved interpolasjon. Av grafen kan det ses at absorbansen, og dermed enzymaktiviteten, var høyest for målingen som ble utført ved 4 C. T [ C] 3.3. ph-optimum for β-galaktosidase Initiell reaksjonshastighet, V, ble bestemt fra absorbansmålinger for syv ulike ph-verdier ved hjelp av dataprogrammet Reaction Kinetics. Innvirkning av ph på reaksjonshastigheten er vist i et plott av ph mot initiell reaksjonshastighet i Figur 3.6. Målingen utført ved ph = 7, 4 ga høyest initiell reaksjonshastighet, noe som indikerer maksimal enzymaktivitet omkring denne ph-verdien. En noe lavere absorbanstopp ved målepunktet for ph = 8, 1 kan også observeres. 9

,14,12,1 V [µmol/min],8,6,4,2 4. Diskusjon 5,5 6 6,5 7 7,5 8 8,5 9 9,5 ph [ ] Figur 3.6: Plott av ph mot initiell reaksjonshastighet, V. Litteraturverdien for temperaturoptimum er på 37 C [4], mens verdien funnet fra forsøket er 4 C. Disse verdiene samsvarer svært bra, tatt i betraktning at 4 C er målepunktet som ligger nærmest 37 C. Bruk av flere målinger i dette temperaturområdet ville gitt et mer nøyaktig resultat. ph-optimum funnet fra forsøket er 7,4 og litteraturverdien er 7,2-7,3 [4]. Verdien fra forsøket ligger svært nær faktisk verdi for enzymet. Litteraturverdien gjelder for 3 C, mens temperaturen under forsøket ikke ble målt. Denne temperaturforskjellen vil kunne gi utslag i enzymaktiviteten og gi avvik. ph = 7, 4 er det målepunktet som ligger nærmest litteraturverdien, så bruk av flere målepunkter i dette området kunne gitt et annet resultat. Beregnede verdier for K M ble,2256 µmol/ml,,2168 µmol/ml og,2212 µmol/ml ved bruk av henholdsvis Lineweaver-Burk, Eadie-Hofstee og Michaelis-Menten. De tre metodene gav meget likt resultat. Litteraturverdien er på,95 µmol/ml [4] og stemmer dårlig overens med resultatene fra forsøket. Den eneste reaksjonsbetingelsen som er oppgitt for litteraturverdien er at reaksjonen kjøres i fravær av NaCl, og kan derfor gjelde for andre betingelser enn forsøket ble utført ved. Beregnede verdier for V max ble,2112 µmol/min,,261 µmol/min og, 21 µmol/min ved bruk av henholdsvis Lineweaver-Burk, Eadie-Hofstee og Michaelis-Menten. De tre metodene gav svært like verdier for V max. Litteraturverdien for V max er 36 µmol/ml/mg enzym [5]. Denne verdien kan ikke sammenlignes med beregnet verdi, da mengde enzym ikke er kjent i forsøket. 1

5. Konklusjon Temperaturoptimum ble funnet til å være 4 C og ph-optimum ble funnet til å være 7,4. Disse verdiene stemmer godt overens med litteraturverdiene. Beregnet verdi for K M ble ca.,22 µmol/ml og beregnet verdi for V max ble ca.,21 µmol/min. K M stemmer dårlig overens med litteraturverdien, mens V max ikke kan sammenlignes grunnet ukjent mengde enzym. Trondheim, 29. februar 212. Lene Brattsti Dypås Katrine Bringe Ove Øyås 11

Litteratur [1] Kurshefte (212), Laboratoriekurs i TBT417 Biokjemi 2, NTNU, Trondheim. [2] The effect of temperature on enzyme activity [online]. Kilde: Brooklyn College. Tilgjengelig fra http://academic.brooklyn.cuny.edu/biology/bio4fv/page/ enz_act.htm [Hentet 2. februar 212] [3] The effect of ph on enzyme actvity [online]. Kilde: Brooklyn College. http://academic.brooklyn.cuny.edu/biology/bio4fv/page/ph_and_.htm [Hentet 2. februar 212] [4] Beta-galactosidase [online]. Kilde: BRENDA. http://www.brenda-enzymes.org/literature/lit.php4?e=3.2.1.23&r=171273 [Hentet 2. februar 212] [5] Beta-galactosidase [online]. Kilde: Uniprot. http://www.uniprot.org/uniprot/p722 [Hentet 2. februar 212] 12

A. Bestemmelse av K M og V max for β-galaktosidase Tabell A.1: Verdier for absorbans ved 42 nm for ulike initielle konsentrasjoner av ONPG, [ONPG], målt over et tidsrom på 3 minutter. [ONPG] =, 556 [µmol/ml] [ONPG] =, 1111 [µmol/ml] Absorbans, 42 nm [ONPG] =, 1667 [µmol/ml] [ONPG] =, 2222 [µmol/ml] [ONPG] =, 2778 [µmol/ml],33,41,56,63,69,73,42,47,65,74,85,87,5,52,75,85,98,11,58,58,84,97,11,114,67,63,93,18,122,128,75,68,12,119,134,141,83,74,112,13,147,155,92,79,12,141,159,169 1,,85,128,152,172,182 1,8,9,137,163,184,197 1,17,95,146,174,196,211 1,25,1,155,185,28,225 1,33,15,163,195,22,238 1,42,11,172,26,232,251 1,5,114,18,217,244,265 1,58,118,188,228,257,279 1,67,122,195,237,27,292 1,75,126,23,248,283,35 1,83,129,21,258,294,319 1,92,133,218,268,36,332 2,,137,225,278,318,346 2,8,14,232,287,328,36 2,17,143,239,296,341,372 2,25,146,245,36,352,385 2,33,149,252,315,364,397 2,42,152,258,325,375,41 2,5,155,264,334,387,424 2,58,158,27,342,397,435 2,67,16,276,351,47,448 2,75,163,282,359,419,461 2,83,165,287,367,429,473 2,92,167,293,377,438,485 3,,17,298,384,45,497 13

Sammenhengen mellom målte absorbansverdier og tid gitt i Tabell A.1 er vist for ulike initielle konsentrasjoner av ONPG i Figur A.1-Figur A.5.,6 [ONPG] =,556 µmol/ml,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur A.1: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for initiell ONPG-konsentrasjon [ONPG] =, 556 µmol/ml. Lineær regresjon ga linjen y =, 68x+, 226 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99741. En del av de siste datapunktene er utelatt fra regresjonen for å oppnå større grad av linearitet.,6 [ONPG] =,1111 µmol/ml,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur A.2: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for initiell ONPG-konsentrasjon [ONPG] =, 1111 µmol/ml. Lineær regresjon ga linjen y =, 13x+, 267 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 9981. En del av de siste datapunktene er utelatt fra regresjonen for å oppnå større grad av linearitet. 14

,6 [ONPG] =,1667 µmol/ml,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur A.3: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for initiell ONPG-konsentrasjon [ONPG] =, 1667 µmol/ml. Lineær regresjon ga linjen y =, 1281x+.228 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 9994. En del av de siste datapunktene er utelatt fra regresjonen for å oppnå større grad av linearitet.,6 [ONPG] =,2222 µmol/ml,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur A.4: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for initiell ONPG-konsentrasjon [ONPG] =, 2222 µmol/ml. Lineær regresjon ga linjen y =, 1429x+, 284 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99926. 15

,6 [ONPG] =,2778 µmol/ml,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur A.5: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for initiell ONPG-konsentrasjon [ONPG] =.556 µmol/ml. Lineær regresjon ga linjen y =, 16x+, 229 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99964. ONPG-konsentrasjon etter fortynning, [ONPG], ble beregnet fra [ONPG] = V ONPG,[ONPG] utdelt V tot (A.1) der [ONPG] utdelt er konsentrasjonen av ONPG i utdelt løsning før fortynning, V ONPG er volum ONPG-løsning tilsatt og V tot er totalt volum. Med V ONPG =, 2 ml, [ONPG] utdelt = 2, 5 µmol/ml og V tot = 9 ml gir dette for eksempel [ONPG] = 2, 5, 2 9 =, 56 µmol/ml Mengden ONPG i kyvetten før absorbansmålinger, n ONPG,, kan videre finnes fra n ONPG, = [ONPG] V kyvette (A.2) der V kyvette er volum ONPG tilsatt i kyvetten. med V kyvette = 2, 5 ml gir dette for eksempel n ONPG, =, 56 2, 5 =, 139 µmol Initiell hastighet, V, ble beregnet fra uttrykket V = d(n ONPG,) dt = n ONPG, dod OD max dt (A.3) der OD max er maksimal absorbans og dod er momentan endring i absorbans per tidsenhet. dt Med n ONPG, =, 139 µmol, OD max =, 23 og dod =, 68 min 1 gir dette for dt eksempel, 139, 68 V = =, 416 µmol/min, 23 16

K M og V max ble beregnet på ulike måter fra Lineweaver-Burk- og Eadie-Hofstee-plott. Lineweaver-Burk-plottet ga 1/K M som skjæringspunkt med x-aksen, 1/V max som skjæringspunkt med y-aksen og K M /V max som stigningstall, mens Eadie-Hofstee-plottet ga V max /K M som skjæringspunkt med x-aksen, V max som skjæringspunkt med y-aksen og K M som stigningstall. Initielle substratkonsentrasjoner, [ONPG], og korresponderende V -verdier benyttet i framstilling av plott er gitt Tabell A.2. Flere ulike Michaelis-Mentenkurver ble også framstilt ved innsetting av ulike verdier av V max i ligning (1.1). Disse ble plottet sammen med en kurve basert på målte verdier for sammenligning. Tabell A.2: Beregnede verdier for stigningstallet dod/dt og initiell hastighet, V, samt målte verdier for maksimal absorbans, OD max for ulike startmengder av ON- PG i kyvetten, n ONPG,. n ONPG, [µmol] OD max [-] dod dt [min 1 ] V [µmol/min],139,23,68,416,278,395,1,75,417,598,128,97,556,765,143,138,694,966,16,115 17

B. Bestemmelse av temperatureffekt for β-galaktosidase Målte verdier for absorbans ved 42 nm for ulike temperaturer er gitt i Tabell B.1. Tabell B.1: Målte verdier for absorbans ved 42 nm for ulike temperaturer, T. T [ C] Absorbans, 42 nm 9,5,35 22,5,51 3,,83 4,,117 44,5,1 5,,28 6,5,11 18

C. Bestemmelse av ph-optimum for β-galaktosidase Tabell C.1: Verdier for absorbans ved 42 nm for ulike ph-verdier målt over et tidsrom på 3 minutter. Tid Absorbans, 42 nm [min] ph = 5,8 ph = 6,7 ph = 7,4 ph = 7,7 ph = 7,9 ph = 8,1 ph = 9,1,33,33,44,87,67,74,79,5,42,32,5,12,8,88,94,56,5,32,56,118,92,12,18,63,58,32,62,132,14,115,123,71,67,33,68,147,117,129,137,78,75,34,74,162,129,141,151,86,83,35,8,176,141,154,165,93,92,36,86,191,156,168,18,1 1,,36,91,25,168,182,194,17 1,8,37,96,219,181,195,29,115 1,17,38,12,233,193,29,222,121 1,25,4,19,247,25,223,236,129 1,33,42,115,261,218,236,25,136 1,42,43,12,276,23,248,264,143 1,5,44,125,289,243,261,278,149 1,58,44,13,33,255,275,294,156 1,67,44,135,316,267,288,39,163 1,75,45,14,329,279,31,32,17 1,83,47,146,342,291,315,334,178 1,92,48,152,355,32,329,346,185 2,,48,157,367,315,342,36,191 2,8,48,162,38,327,355,374,198 2,17,49,166,392,34,368,387,26 2,25,49,172,45,352,381,399,213 2,33,5,177,418,364,394,412,22 2,42,51,182,43,376,45,426,227 2,5,51,187,441,387,417,44,233 2,58,52,191,453,399,43,452,239 2,67,52,196,464,412,443,465,247 2,75,54,21,475,423,456,479,253 2,83,55,25,486,433,468,491,258 2,92,54,21,497,445,481,52,266 3,,56,215,58,457,492,515,272 19

Sammenhengen mellom målte absorbansverdier og tid gitt i Tabell A.1 er vist for ulike ph-verdier i Figur C.1-Figur C.7.,6 ph = 5,8,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.1: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 5, 8. Lineær regresjon ga linjen y =, 95x +.279 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 9884.,6 ph = 6,7,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.2: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 6, 7. Lineær regresjon ga linjen y =, 67x +.235 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 9997. En del av de siste datapunktene er utelatt fra regresjonen for å oppnå større grad av linearitet. 2

,6 ph = 7,4,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.3: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 7, 4. Lineær regresjon ga linjen y =, 1668x +, 362 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99921. En del av de siste datapunktene er utelatt fra regresjonen for å oppnå større grad av linearitet.,6 ph = 7,7,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.4: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 5, 8. Lineær regresjon ga linjen y =, 1467x +, 27 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99977. 21

,6 ph = 7,9,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.5: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 7, 9. Lineær regresjon ga linjen y =, 1575x +, 244 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99978.,6 ph = 8,1,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.6: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 8, 1. Lineær regresjon ga linjen y =, 1639x +, 297 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 99948. 22

,6 ph = 9,1,5 Absorbans, 42 nm,4,3,2,1,5 1 1,5 2 2,5 3 Figur C.7: Målte absorbansverdier som funksjon av tid for ph = 9, 1. Lineær regresjon ga linjen y =, 839x +, 23 med bestemmelseskoeffisient R 2 =, 9997. ONPG-konsentrasjon etter fortynning, [ONPG], ble beregnet fra [ONPG] = V ONPG,[ONPG] utdelt V tot (C.1) der [ONPG] utdelt er konsentrasjonen av ONPG i utdelt løsning før fortynning, V ONPG er volum ONPG-løsning tilsatt og V tot er totalt volum. Med V ONPG = 1 ml, [ONPG] utdelt = 2, 5 µmol/ml og V tot = 9 ml gir dette for eksempel [ONPG] = 2, 5 1 9 =, 2778 µmol/ml Mengden ONPG i kyvetten før absorbansmålinger, n ONPG,, kan videre finnes fra n ONPG, = [ONPG] V kyvette (C.2) der V kyvette er volum ONPG tilsatt i kyvetten. med V kyvette = 2, 5 ml gir dette for eksempel n ONPG, =, 2778 2, 5 =, 695 µmol Initiell hastighet, V, ble beregnet fra uttrykket V = d(n ONPG,) dt = n ONPG, dod OD max dt (C.3) der OD max er maksimal absorbans og dod er momentan endring i absorbans per tidsenhet. dt OD max ble i denne delen av forsøket målt til,939. Med n ONPG, =, 695 µmol og =, 95 min 1 gir dette for eksempel dod dt V =, 695, 95, 939 =, 7 µmol/min 23

Tabell C.2: Beregnede verdier for stigningstallet dod/dt og initiell hastighet, V, for ulike ph-verdier. ph [-] dod [min 1 ] dt V [µmol/min] 5,8,279,7 6,7,67,495 7,4,1668,123 7,7,1467,19 7,9,1575,117 8,1,1639,121 9,1,839,62 24

D. B-spørsmål 1.. Ut fra hvilke kriterier utledes Michaelis-Menten-likningen? Michaelis-Menten likningen utledes fra følgende kriterier: Ligninger for reaksjonshastighet Massebalanse med hensyn på enzym Reaksjonen ES E + P Krav om stasjonær tilstand, der mengde ES-intermediat er konstant 2.. Michaelis-Menten plottet flater ikke ut på samme måte som på figuren i kursheftet. Hvilke konsekvenser får dette for resultatene i dette forsøket? Hva kunne dere gjort for å unngå dette problemet? Michaelis-Menten-plottet flater ikke ut på samme måte som på figuren i kursheftet, fordi det ikke ble utført målinger for høy nok konsentrasjon av substrat. Ved å utføre flere målinger ved høyere substratkonsentrasjoner, kunne dette problemet blitt unngått. Dette fører til at beregnede verdier for V max og K M blir veldig usikre. 3.. Beregn µmol ONPG ved start (ONPG ) i kyvetten i forsøk 3B. Vis beregningene. (Fasit:,694 µmol ONPG). Det benyttes en løsning med konsentrasjon 2,5 mm ONPG= 2, 5 1 3 mol/l. Det ble overført 1 ml av denne løsningen, altså 2, 5 1 6 mol. Det ble så laget en ny løsning med buffer: 1 ml 2,5 mm ONPG + 8 ml buffer = 9 ml løsning. Konsentrasjonen av ONPG i denne løsningen blir da: (2, 5 1 6 )/(9 1 3 ) =, 278 1 3 mol/l =,278 mm. Det ble benyttet 2,5 ml av denne løsningen i kyvetten, slik at antall mol ONPG i kyvetten blir:, 278 1 3 mol/l 2, 5 1 3 L =, 695 µmol. 25