ENDRINGSRAPPORT. Prøvetakingssted: Nordbotnet, Nesna kommune. Dato for prøvetaking:

Transkript

1 ENDRINGSRAPPORT Rapportens tittel: ASC-undersøkelse ved Nordbotnet i Nesna kommune, mai 2018 ID Prosjekt nr.: ASC Oppdragsgiver: Tomma Laks AS / Nova Sea AS Kontaktperson: Samuel Anderson Prøvetakingssted: Nordbotnet, Nesna kommune Dato for prøvetaking: Ansvarlig for prøvetaking: Aqua Kompetanse AS v/kristine Brokke Ansvarlig for rapportering: Aqua Kompetanse AS v/kristine Brokke Avvik/endringer til opprinnelig rapport: Det er foretatt en endring i ordlyd på side 7, der kriterium er beskrevet. Det er presisert at dersom 18S-markøren vektlegges så er det lite trolig at kriterium oppfylles ved stasjon ASC1, mens dersom COI-markøren tillegges størst vekt, vil det kunne føre til at kriterium oppfylles. Videre fører dette til, at det ikke blir gitt en vurdering av om ASC1 oppfyller kriterium Namsos, Christine Klykken

2 Prosess Miljø / RAPPORTERING (A) Godkjent dato (Øystein Trana) Endret dato (Øystein Trana) Siste revisjon Neste revisjonsdato ASC-undersøkelse ved Nordbotnet i Nesna kommune, mai 2018 Nova Sea AS og Tomma Laks AS Etter ASC Salmon Standard v1.1 AQUA KOMPETANSE AS ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET

3 Kriterium Aqua Kompetanse AS Storlavika Flatanger Mobil: E-post: post@aqua-kompetanse.no Internett: Bankgiro: Org. Nr.: Rapportens tittel: ASC-undersøkelse ved Nordbotnet i Nesna kommune, mai 2018 Forfatter: Kristine Brokke Feltdato: Toktleder: Kristine Brokke Rapportdato: Rapportnummer: ASC Antall sider uten vedlegg: 11 Antall sider totalt: 29 Oppdragsgiver: Nova Sea AS Kontaktperson: Samuel Anderson Lokalitet: Nordbotnet Lokalitetsnummer: Driftsleder: Dag Ivar Dahl MTB tillatelse: 4680 tonn N Fylke: Nordland Koordinater: Antall merder: Ø Kommune: Nesna Merdomkrets: - Bakgrunn for undersøkelse: ASC sertifisering Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE ASC1 ASC2 ASC3 ASC , Rapportansvarlig: Bestått H =2.52±0.23 AMBI = 3.49±0.46 H = 3.33±0.35 AMBI = 2.64± ,2 9,44 Kvalitetssikrer: Kristine Brokke Christine Klykken Emneord: Miljøanalyse; sediment; bunndyrsanalyser; redoks; prøvetaking; ASC; Salmon Standard ID Rapporten er tilgjengelig ved forespørsel 2018 Aqua Kompetanse AS. Kopiering av rapporten kan kun skje i sin helhet. Dersom deler av rapporten (konklusjoner, figurer, tabeller, bilder eller annen gjengivelse) er ønskelig, er dette kun tillatt etter skriftlig samtykke fra Aqua Kompetanse AS. ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 3

4 Innholdsfortegnelse 1. Materiale og metode Undersøkelsesområde Stasjonsplassering Innsamlingsmetode edna Kobberanalyser Redokspotensial Vurdering etter ASC Salmon Standard Kriterium Kriterium Kriterium Kriterium Resultater Redokspotensial og ASC Kriterium Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Kobberanalyse og ASC Kriterium Referanser Vedlegg A edna-rapport ID-Gene Vedlegg B - Akvaplan-NIVA rapport 25 ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 4

5 1. Materiale og metode Aqua Kompetanse AS har gjennomført feltarbeid for å innhente prøvemateriale for oppdragsgiver Nova Sea AS. Prøvetaking og stasjonsplassering ble utført i henhold til metodikk beskrevet i ASC Salmon Standard V 1.1, NS-EN ISO 16665:2013 og NS-EN ISO 5667:2004 av Kristine Brokke fra Aqua Kompetanse AS den ID-Gene har stått for genetiske analyser (edna) av sedimentprøvene, og beregning av diversitetsindekser basert på RNA-markøren 18S V1V2. ALS Laboratory Group (underleverandør av Akvaplanniva AS) har stått for kobberanalyser. 1.1 Undersøkelsesområde Undersøkelsesområdet ligger i Nesna kommune i Nordland, på østsiden av øya Tomma (Figur 1). Anlegget ligger over en skråning som går fra 70 meter ved anleggsramme til 180 meter midtfjords mellom Tomma og Hadnesøya. Sedimentet rundt anlegget og sørover består i hovedsak av sand, med noe leire og grus og store mengder stein (Brokke, 2017). Figur 1: Oversiktskart som viser anleggsplassering og undersøkelsesområdet (rød firkant). Målestokk 1: Kilde: Fiskeridirektoratets karttjeneste. 1.2 Stasjonsplassering ASC definerer et område rundt anlegget hvor det er tillatt med en viss påvirkning fra oppdrettsvirksomheten. Dette området kalles AZE Allowable Zone of Effect -, og er definert i ASC Salmon Standard V 1.1 som 30 meter fra merd. Ved prøvetaking skal det legges stasjoner både innenfor og utenfor AZE, fortrinnsvis èn stasjon med hovedstrømretningen og èn mot hovedstrømretningen både innenfor og utenfor AZE. Strømmen går sør-sørvest, og to stasjoner er lagt i sørenden; ASC 1 i AZE, som er lagt på samme sted som C1 fra 2017 og ASC 3, som er lagt på samme sted som C3 fra 2017, 140 m i fra anlegget (Brokke, 2017). ASC 2 er lagt til nordenden av anlegget, innenfor ramma ettersom de to nordligste merdene ikke var i bruk denne syklusen. ASC 4 ligger 87 m nord for anlegget, og referansestasjonene ligger hhv. 500 og 1000m i nordlig retning. ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 5

6 Figur 2 viser stasjonenes plassering i forhold til anlegget og dominerende strømretning, mens Tabell 1 gir stasjonskoordinater og øvrig informasjon i forhold til plassering. Figur 2: Kartet viser anleggsplassering sammen med ASC-stasjoner og fortøyningsliner. Lilla pil viser orientering av kart, gul pil viser hovedstrømretning på 50 meters dyp (spredningsdyp). Tabell 1: Oversikt over stasjonene plassering i forhold til AZE, stasjonsdyp og avstand til anlegg. Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref. 1 ASC ref. 2 Koordinater N N N N N N Ø Ø Ø Ø Ø Ø Dybde (m) Avstand til anlegg (m) Innsamlingsmetode Makrofauna (bunndyr) og sedimentprøver ble samlet inn ved hjelp av en 0.1 m² Van Veen-grabb, og på hver prøvestasjon ble det foretatt to grabbhugg. Ved hvert hugg ble det tatt ut 2 x 5 ml overflatesediment fra ulike steder gjennom topplukene på grabben. Sedimentene ble tatt ut ved hjelp av sterile skjeer, og overført til prøverør tilsatt 10 ml Life Guard TM RNA buffer. Engangshansker ble benyttet ved prøvetaking for å unngå genetisk kontaminering. Ved hver stasjon ble det også tatt ut ml sediment til kobberanalyser. Sedimentprøvene ble fryst ned frem til analyse. Ved hver stasjon ble det også målt redokspotensial edna For metodebeskrivelse av genetiske analyser (edna) se rapport fra ID-Gene i Vedlegg A Kobberanalyser For metodehenvisning vedrørende kobberanalyser se rapport fra Akvaplan-niva i Vedlegg B. ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 6

7 1.3.3 Redokspotensial E h (redokspotensial; reduksjons-oksidasjonslikevekter) ble målt i overflatesedimentet (ca. 1 cm ned) ved bruk av HQ40d multimeter og tilhørende redokselektrode (MTC101). Det ble også målt sedimenttemperatur og E obs i overflatevannet ved lokaliteten. I atmosfærisk ekvilibrert overflatevann ligger E h på rundt 400 mv, mens anoksiske vannmasser og sedimenter vil ha E h ned mot -200 mv. E h (redokspotensial) bestemmes ut fra det observerte hvilepotensialet i prøven (målt verdi; E obs) og standardpotensialet til referanseelektroden (E ref; Tabell 2): E h = E obs + E ref Tabell 2: Standardpotensiale til referanseelektrode. Tilpasset fra MTC101 brukermanual (Hach Company, 2014). Temperatur ( C) Standardpotensiale i mv (Eref) 0,0 4, ,0 9, ,0 14, ,0 19, Vurdering etter ASC Salmon Standard Aqua Kompetanse AS vurderer lokaliteten ut fra fire ASC kriteria for biodiversitet og bentiske effekter og ikketerapeutiske kjemikalier (kobber) fra akvakulturanlegg. Vurderingene fremstilles i tekst og med fargekode for bestått/ikke bestått kriterium, hhv. grønn og rød Kriterium Redokspotensialet i sedimentene utenfor AZE skal være > 0 mv Kriterium Biodiversitetsindeksene skal vise god eller høy økologisk kvalitet i sedimentet utenfor AZE. Dette bestemmes ut fra AZTI Marine Biotic Index (AMBI) eller Shannon-Wiener Index (H ), hvor AMBI skal være 3,3, eller H > 3, Kriterium Innenfor AZE skal det være 2 tallrike taksa som ikke er forurensningsindikatorer 1. Med tallrike taksa menes mer enn 100 individer per m 2, og forurensningsindikatorer er basert på økologiske grupper (EG) som beskrevet i Rygg og Norling (2013): EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer. Ved bruk av edna er det ikke mulig å kvantifisere individtall, og kriterium baseres derfor på relativ frekvens av forurensningsindikatorer mot ikkeforurensningsindikatorer. Tilstedeværelsen av flere arter tilhørende EG I IV sett opp mot lav relativ frekvens av forurensningsindikatorer vil gi en indikasjon på at kriteriet er bestått. 1 Dersom det er naturlig lave individtall (< 100 per m 2 ) i området skal dette sammenlignes med resultater fra referansestasjonen, og bedømmes ut fra hvor my lavere individtallet er innenfor AZE enn ved referansestasjonen. ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 7

8 1.4.4 Kriterium Kobbernivåene i sedimentene er < 34 mg/kg i tørrvekt 2 utenfor AZE. Uttak av sedimentprøver til kobberanalyser ved felt, og resultater i foreliggende rapport gir nødvendig bevis til ASC Kriterium Resultater 2.1 Redokspotensial og ASC Kriterium Samtlige av målingene ved Nordbotnet ga en positiv observert E h (Tabell 3 og 4) og følgelig består Nordbotnet ASC Kriterium om E h > 0 mv utenfor AZE. Tabell 4 viser resultatene fra målingene i felt (E obs) og utregnet redokspotensiale E h (E obs + E ref), i tillegg til fremstilling av bestått/ikke bestått ASC Kriterium Tabell 3: Resultater fra målinger i overflatevannet, sedimenttemperatur, og standardpotensiale Eref basert på sedimenttemperatur ved Nordbotnet. Eh i sjø er ikke kalkulert. Sedimenttemperatur: 6,5 C E ref sediment: 221 Sjøtemperatur: 7,6 C E obs sjø: 218,1 Tabell 4: Resultater fra redoksmålinger ved Nordbotnet. Eobs = observert hvilepotensial i prøven (målt verdi); Eh = redokspotensial, bestemt ut fra Eobs og Eref (Eh = Eobs + Eref; Tabell 2). Drift i redoksmålingene (Eobs) markeres med pil. Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon Stasjoner ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref. 1 ASC ref. 2 Eobs (mv) 336, , ,3 200,7 Eh (Eobs + Eref) 557, , ,3 421,7 ASC Kriterium E h > 0 mv Bestått Bestått 2.2 Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Ved ASC1 ble det funnet tre indikatorarter som til sammen utgjorde over 50% av sekvensene ved stasjonen (for 18S V1V2 markøren). Utover dette ble det funnet fjæremarken (Arenicola Marina) som utgjorde 78,3% av den relative frekvensen, ved bruk av COI-markøren, og ingen forurensningsindikatorer. Det er lite trolig at kriterium er oppfylt dersom 18S-markøren benyttes, men ved bruk av COI-markøren, selv om arten som utgjorde 78,3% av sekvensene er art som sjelden eller aldri opptrer på >70 m dyp, så kan det vurderes at kriterium er oppfylt. Med bakgrunn i dette er det derfor ikke gitt en endelig vurdering av om kriteriet er oppfylt som helhet. Ved ASC 2 ble det funnet en rekke arter som klassifiseres innenfor økologisk gruppe I, II og III blant artene med høyest relativ frekvens både ved bruk av COI-markøren og ved bruk av 18S V1V2-markøren. Det ble funnet to indikatorarter ved stasjonen, men sett opp mot de øvrige artene, hadde disse en lavere relativ frekvens, og det kan derfor antas at kriterium i ASC-standarden er oppfylt for denne stasjonen. 2 Dersom kobbernivåene i sedimentet utenfor AZE er > 34 mg/kg sammenlignes resultatene med verdier fra referansestasjon for å se om nivåene utenfor AZE sammenfaller med nivåene ved referansestasjon. Dersom det finnes tidligere undersøkelser med kobberuttak kan dette også brukes for å gjøre en vurdering av tilstand. ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 8

9 Stasjon ASC 4 har indeksverdier som er H > 3,0 og AMBI 3,3, og består akkurat kriterium i ASCstandarden. ASC 3 derimot, har for dårlige indeksverdier til å bestå kriteriet både på Shannon Wiener og AMBI-indeksene. Tabell 5: Tabellen viser identifisert makro- og meiofauna fra stasjonene innenfor AZE ved Nordbotnet basert på relativ frekvens for 18S V1V2 og COI markører. Økologiske grupper i AMBI og NSI indeksene er også gitt der de er tilgjengelig. Forurensningsindikatorarter (AMBI og NSI økologisk gruppe V) er markert med rødt. Tabellen er tilpasset etter Tabell 4 i rapport fra ID-Gene i Vedlegg A. ASC1 ASC2 Taksa Relativ frekvens Økologisk gruppe 18S V1V2 COI AMBI NSI Arenicola marina - 78,3 III ik Taksa Barantolla americana Relativ frekvens Økologisk gruppe 18S V1V2 COI AMBI NSI - 44,0 I ik Sabatieria pulchra 29,7 - V ik Pholoe baltica 26,5 - I III Polychaeta undet. 26,8 - ik ik Abra nitida 20,8 III III Chaetozone setosa - 17,9 IV IV Capitellida undet. 18,8 - V III Capitella sp. 11,5 - V III Maldane sarsi 15,2 - II IV Capitellida undet. 10,5 - V III Cephalothrix iwatai - 10,2 III ik Nematoda undet. 7,2 - III ik Paraonidae undet. 6,6 - II ik Thyasira sarsi 5,3 - III IV Anobothrus gracilis 5,9 - III II Phyllodocida undet. 2,9 - ik II Retusa sp. 4,3 - ik ik Phascolion strombus 2,9 - I II Chaetoderma nitidulum - 4,2 II II Pectinaria koreni - 2,2 IV IV Pherusa plumosa 4,1 - III III Nucula sulcata 1,4 - I II Ophryotrocha maculata Cephalothrix filiformis 3,2 - III ik - 0,9 ik ik Phyllodocida undet. 2,9 - ik II Anobothrus gracilis 0,5 - III II Mugga wahrbergi 0,2 2,4 II II Corymorpha nutans 0,5 0,2 I ik Terebellida undet. 2,0 - ik ik Modiolus modiolus 0,5 - I I Eteone longa 1,8 - III IV Mytilus edulis 0,5 - III IV Pholoe baltica - 0,2 I III Lumbrineris funchalensis Paramphinome jeffreysii 1,8 - II ik 0,5 1,4 III III Ophiura sarsii - 0,1 II II Priapulus caudatus 0,7 1,3 III III Mugga wahrbergi - <0,1 II II Melinna albicincta - 1,2 III II ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 9

10 Barantolla americana - <0,1 I ik Opheliidae undet. 1,1 - ik ik Nucula nucleus <0,1 I ik Sabellida undet. 1,1 - I II Balanus balanus - <0,1 ik ik 10rc asp. 1,1 - I ik Obelia geniculata - <0,1 II ik Eunicida undet. 0,5 - ik ik Ophelina acuminata - <0,1 I III Spionida undet. 0,5 - III III Rygg oophryotrocha craigsmithi - <0,1 IV IV Mytilus edulis 0,5 - III IV Ophryotrocha scutellus - <0,1 IV IV Capitella sp. 0,2 - V III Euspira montagui - <0,1 II II Malacoceros fuliginosus Lepidonotus sublevis 0,2 - II ik - <0,1 V V Thyasira sarsi 0,2 - III IV Ophryotrocha cyclops - <0,1 IV IV Tharyx sp. 0,2 - IV III Pectinaria auricoma - <0,1 I II Arenicola marina 0,2 - III ik Lacuna vincta 0,2 - II ik Obelia geniculata 0,1 - II ik Retusa umbilicata 0,1 - II ik Ophryotrocha maculata <0,1 - ik ik Evadne nordmanni <0,1 - ik ik Yoldiella frigida <0,1 - I III Ophryotrocha craigsmithi <0,1 - IV IV Ophryotrocha scutellus <0,1 - IV IV Ophryotrocha cyclops <0,1 - IV IV * Økologiske grupper: EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer (Rygg og Norling, 2013). Ik = ikke kjent gruppe. Tabell 6: Resultater fra edna-analyser, med antall arter med relativ frekvens >0,1 ved hver stasjon, samt indeks-score for Shannon-Wiener (H ) og AMBI, og resultater for ASC kriterium og ved Nordbotnet. Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref. 1 ASC ref. 2 Antall arter Shannon-Wiener (H ) 2.63± ± ± ± ± ±0.14 ASC Kriterium H > 3,0 Ikke bestått Bestått AMBI 3.44± ± ± ± ± ±0.17 ASC Kriterium AMBI 3,3 Ikke bestått Bestått ASC Kriterium Bestått ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 10

11 2.3 Kobberanalyse og ASC Kriterium Kobberanalysene fra Nordbotnet viser at det er større mengder kobber ved ASC 1, 3 og 4, og mindre ved ASC 2 og begge referansestasjonene. ASC 3 har størst mengde av alle stasjonene, som likevel er godt under kravet på 34 mg/kg. Nordbotnet består derfor ASC kriterium Tabell 7: Resultater fra kobberanalysene som ble utført ved Nordbotnet samt resultat for ASC kriterium Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref. 1 ASC ref. 2 Cu mg/kg 19,9 5,91 22,2 9,44 4,92 3,34 ASC Kriterium < 34 mg CU/kg Bestått Bestått ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 11

12 Referanser Aquaculture Stewardship Council (2017) ASC Salmon Standard V1.1. Brokke, K. E. (2017) C-undersøkelse ved Nordbotnet i Nesna kommune, juni Rapportnummer C levert av Aqua Kompetanse AS. Hach Company (2014) User Manual gel filled ORP/Redox Probe: Model MTC10101, MTC10103, MTC10105, MTC10110, MTC10115 or MTC doc Edition 4. Norsk Standard (2004). Vannundersøkelse. Prøvetaking. Del 19: Veiledning i sedimentprøvetaking i marine områder (ISO 5667:2004). Standard Norge. NS-EN ISO : Norsk Standard (2013) Vannundersøkelse. Retningslinjer for kvantitativ prøvetaking og prøvebehandling av marin bløtbunnsfauna (ISO : 2014). Standard Norge. NS-EN ISO 16665:2013. Rygg, B. & Norling, K. (2013) Norwegian Sensitivity Index (NSI) for marine macro invertebrates, and an update of Indicator Species Index (ISI). NIVA rapport SNO ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 12

13 Vedlegg A edna-rapport ID-Gene ENDRINGSRAPPORT ASC NORDBOTNET AQUA KOMPETANSE AS 13

14 JP/TC/KC Environmental DNA-based bioassessment of salmon farm impact on benthic biodiversity - Nordbotn Report for Aqua Kompetanse AS (Kristine Brokke), prepared by Prof. Jan Pawlowski, Dr. Tristan Cordier, and Mgr. Kristina Cermakova (University of Geneva & ID-GENE ecodiagnostics TM ) Summary The environmental impact of the Nordbotn farm on benthic diversity was assessed as part of ASC survey using ID-Gene ecodiagnostics TM sedimentary DNA bioassessment test. The values of biotic indices predicted using 18S marker show moderate ecological status for stations ASC 1 and ASC 3, good or moderate status for station ASC 2 and good status for ASC 4 and both reference stations. The taxonomic lists of zoobenthos identified in edna datasets indicate the presence of non-pollution indicator species in all stations. This suggests that Nordbotn site complies with the criteria and of the ASC Salmon Standard. Samples 24 samples collected by Aqua Kompetanse AS were sent to ID-Gene ecodiagnostics TM laboratory in May 28 th, The samples were collected at 6 ASC stations in Nordbotn site (2 grabs per station, 2 replicates per grab). DNA extraction, PCR amplification and High-throughput sequencing Environmental DNA (edna) was extracted from each sediment sample and two marker regions were amplified using PCR: a nuclear (18S V1V2) marker targeting all eukaryotes and a mitochondrial (COI) marker targeting principally zoobenthos. The paired-end sequencing on a MiSeq instrument yielded high quality reads for 18S marker and reads for COI marker. The sequencing depth, i.e. the number of sequences per sample, averages ± for 18S and ± for COI. 1

15 JP/TC/KC Biotic indices The values of six biotic indices (AMBI, NSI, NQI 1, ISI, Shannon, and neqr) have been predicted from the 18S V1V2 edna sequence data using our predictive model trained on others salmon farms in Norway, for which the ecological status of samples was known (Cordier et al., 2017, Cordier et al., 2018). The biotic indices values were predicted for each replicate and the four values (2 replicates x 2 grabs per station) were averaged into a final predicted value for each station (Table 2). Table 1. Threshold values of different biotic indices corresponding to the ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad) Ecological status Very good Good Moderate Bad Very bad Shannon 4,8-5,7 3,0-4,8 1,9-3,0 0,9-1,9 0-0,9 AMBI 0-1,2 1,2-3,3 3,3-4,3 4,3-5,5 5,5-6 NSI NQI1 0,82-0,9 0,63-0,82 0,49-0,63 0,31-0,49 0-0,31 ISI 9, < 4.5 neqr 0, ,2 Table 2. The values of AMBI, NSI, ISI, NQI1, Shannon and neqr predicted from edna data. The colours correspond to ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad). The ± sign indicates standard deviation. Nordbotn ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC Ref. 1 ASC Ref. 2 AMBI 3.44± ± ± ± ± ±0.17 NSI 17.34± ± ± ± ± ±0.92 ISI 7.36± ± ± ± ± ±0.63 NQI1 0.61± ± ± ±0 0.7±0 0.7±0.03 Shannon 2.63± ± ± ± ± ±0.14 neqr 0.548± ± ± ± ± ±0.03 2

16 JP/TC/KC Taxonomic composition Zoobenthos list was created for each station based on 18S and COI edna sequences assigned to macro- and meiofauna. In Table 3, the taxa are listed with their relative frequencies within the 18S and COI edna datasets of each station separately. AMBI and NSI ecological groups, as defined in the reference paper of Rygg and Norling (2013), are also indicated. The zoobenthos lists are summarized in annex, with taxa ranked according to their relative frequencies within the total edna datasets of COI and 18S markers. Table 3. List of macro- and meiofaunal taxa and their relative frequencies in the edna datasets of each station for 18S and COI markers. The ecological groups (EG) AMBI and NSI are indicated if available, otherwise NA is marked. The pollution indicator species classified in EG 5 are marked in red. Nordbotn ASC 1 (COI) Nordbotn ASC 1 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Arenicola marina 3 NA 78,3 Sabatieria pulchra 5 NA 29,7 Chaetozone setosa ,9 Polychaeta undet. NA NA 26,8 Pectinaria koreni 4 4 2,2 Capitella sp ,5 Ophryotrocha maculata NA NA 0,9 Capitellida undet ,5 Corymorpha nutans 1 NA 0,2 Nematoda undet. 3 NA 7,2 Pholoe baltica 1 3 0,2 Thyasira sarsi 3 4 5,3 Ophiura sarsii 2 2 0,1 Phyllodocida undet. NA 2 2,9 Mugga wahrbergi 2 2 <0,1 Phascolion strombus 1 2 2,9 Barantolla americana 1 NA <0,1 Nucula sulcata 1 2 1,4 Balanus balanus NA NA <0,1 Anobothrus gracilis 3 2 0,5 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Corymorpha nutans 1 NA 0,5 Ophelina acuminata 1 3 <0,1 Mytilus edulis 3 4 0,5 Nucula nucleus 1 NA <0,1 Modiolus modiolus 1 1 0,5 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 <0,1 Ophryotrocha scutellus 4 4 <0,1 Euspira montagui 2 2 <0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 Ophryotrocha cyclops 4 4 <0,1 Pectinaria auricoma 1 2 <0,1 3

17 JP/TC/KC Nordbotn ASC 2 (COI) Nordbotn ASC 2 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Barantolla americana 1 NA 44 Pholoe baltica ,5 Abra nitida ,8 Capitellida undet ,8 Pholoe baltica ,9 Maldane sarsi ,2 Cephalothrix iwatai 3 NA 10,2 Paraonidae undet. 2 NA 6,6 Chaetoderma nitidulum 2 2 4,2 Anobothrus gracilis 3 2 5,9 Mugga wahrbergi 2 2 2,4 Retusa sp. NA NA 4,3 Paramphinome jeffreysii 3 3 1,4 Pherusa plumosa 3 3 4,1 Priapulus caudatus 3 3 1,3 Cephalothrix filiformis 3 NA 3,2 Melinna albicincta 3 2 1,2 Phyllodocida undet. NA 2 2,9 Arenicola marina 3 NA 0,2 Terebellida undet. NA NA 2 Lacuna vincta 2 NA 0,2 Eteone longa 3 4 1,8 Obelia geniculata 2 NA 0,1 Lumbrineris funchalensis 2 NA 1,8 Retusa umbilicata 2 NA 0,1 Opheliidae undet. NA NA 1,1 Ophryotrocha maculata NA NA <0,1 Sabellida undet ,1 Evadne nordmanni NA NA <0,1 Arca sp. 1 NA 1,1 Yoldiella frigida 1 3 <0,1 Priapulus caudatus 3 3 0,7 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 <0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,5 Ophryotrocha scutellus 4 4 <0,1 Eunicida undet. NA NA 0,5 Ophryotrocha cyclops 4 4 <0,1 Spionida undet ,5 Mytilus edulis 3 4 0,5 Capitella sp ,2 Lepidonotus sublevis 2 NA 0,2 Thyasira sarsi 3 4 0,2 Mugga wahrbergi 2 2 0,2 Tharyx sp ,2 4

18 JP/TC/KC Nordbotn ASC 3 (COI) Nordbotn ASC 3 (18S) Relative Ecol. group Relative Ecol. group frequency Taxon frequency Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Arenicola marina 3 NA 64,8 Capitella sp ,2 Pectinaria koreni ,9 Lepidonotus sublevis 2 NA 19,1 Cephalothrix iwatai 3 NA 3,5 Sabatieria pulchra 5 NA 9,9 Chaetozone setosa Thyasira sarsi 3 4 6,6 Evadne nordmanni NA NA 2,1 Capitellida undet ,6 Obelia geniculata 2 NA 1,9 Eteone longa 3 4 3,6 Ophryotrocha maculata NA NA 1,5 Polychaeta undet. NA NA 3,3 Ophelina acuminata 1 3 1,3 Holothuroidea undet. 1 NA 1,3 Barantolla americana 1 NA 0,4 Phyllodocida undet. NA 2 0,7 Pholoe baltica 1 3 0,2 Spionida undet ,3 Nereimyra punctata 3 4 0,2 Syllis ferrani 2 NA 0,3 Corymorpha nutans 1 NA 0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,1 Priapulus caudatus 3 3 0,1 Nereimyra woodsholea 3 NA 0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 0,1 5

19 JP/TC/KC Nordbotn ASC 4 (COI) Nordbotn ASC 4 (18S) Relative Ecol. group Relative Ecol. group Taxon frequency Taxon frequency COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Paramphinome jeffreysii ,7 Lepidonotus sublevis 2 NA 26,8 Cephalothrix iwatai 3 NA 26,3 Pholoe baltica ,8 Priapulus caudatus 3 3 1,4 Cephalothrix filiformis 3 NA 11,9 Mugga wahrbergi Nucula sulcata ,9 Pholoe baltica 1 3 0,9 Priapulus caudatus 3 3 6,5 Chaetozone setosa 4 4 0,3 Paramphinome jeffreysii Anthozoa undet ,2 Eunicida undet. NA NA 4,9 Barantolla americana 1 NA <0,1 Phyllodocida undet. NA 2 3,6 Abra nitida 3 3 <0,1 Sabellida undet ,1 Ophiura sarsii 2 2 <0,1 Opheliidae undet. NA NA 2,1 Pectinaria koreni 4 4 <0,1 Thyasira sarsi 3 4 1,8 Nereimyra punctata 3 4 <0,1 Capitellida undet ,6 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Mugga wahrbergi Lacuna vincta 2 NA <0,1 Spionida undet ,8 Evadne nordmanni NA NA <0,1 Abra nitida 3 3 0,8 Thyasira ferruginea 2 NA <0,1 Anobothrus gracilis 3 2 0,5 Yoldiella frigida 1 3 <0,1 Arca sp. 1 NA 0,5 Nothria conchylega 2 NA <0,1 Apistobranchus typicus 1 NA 0,5 Galathowenia oculata 3 3 <0,1 Amphioplus daleus 2 NA 0,3 Polychaeta undet. NA NA 0,3 Phascolion strombus 1 2 0,3 Ophiuroidea undet ,3 Diplocirrus glaucus 1 2 0,3 Terebellides stroemii 2 2 0,3 Yoldiella orcia 1 1 0,3 6

20 JP/TC/KC Nordbotn ASC Ref.1 (COI) Nordbotn ASC Ref.1 (18S) Relative Ecol. group Relative Ecol. group Taxon frequency Taxon frequency COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Chaetoderma nitidulum Capitellida undet ,2 Mugga wahrbergi ,8 Phyllodocida undet. NA 2 23,9 Barantolla americana 1 NA 19,5 Golfingiida undet. 1 NA 17,4 Paramphinome jeffreysii ,1 Paraonidae undet. 2 NA 5,9 Abra nitida 3 3 3,8 Anobothrus gracilis 3 2 3,7 Obelia geniculata 2 NA 1,9 Maldane sarsi 2 4 3,4 Scalibregma sp. 3 NA 1,4 Terebellida undet. NA NA 2 Priapulus caudatus 3 3 0,8 Retusa sp. NA NA 1,4 Pholoe baltica 1 3 0,5 Holothuroidea undet. 1 NA 1,4 Thyasira ferruginea 2 NA <0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 1,3 Nucula nucleus 1 NA <0,1 Pherusa plumosa Nothria conchylega 2 NA <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,6 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 <0,1 Opheliidae undet. NA NA 0,4 Nereimyra woodsholea 3 NA <0,1 Sabellida undet ,4 Galathowenia oculata 3 3 <0,1 Polychaeta undet. NA NA 0,3 Eunicida undet. NA NA 0,3 Arca sp. 1 NA 0,3 Spionida undet ,3 Neoleanira tetragona 2 3 0,3 Spiophanes kroyeri 3 3 0,3 Pholoe baltica 1 3 0,1 Corymorpha nutans 1 NA 0,1 Tharyx sp ,1 7

21 JP/TC/KC Nordbotn ASC Ref.2 (COI) Nordbotn ASC Ref.2 (18S) Relative Ecol. group Relative Ecol. group Taxon frequency Taxon frequency COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Corymorpha nutans 1 NA 62,3 Nucula sulcata Pholoe baltica ,9 Pholoe baltica ,9 Ophiura sarsii 2 2 3,7 Amphioplus daleus 2 NA 13 Balanus balanus NA NA 1,2 Corymorpha nutans 1 NA 12,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,7 Anobothrus gracilis 3 2 6,9 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,5 Terebellida undet. NA NA 4,4 Nereimyra punctata 3 4 0,4 Phyllodocida undet. NA 2 4,3 Chaetoderma nitidulum 2 2 0,1 Eunicida undet. NA NA 1,5 Arenicola marina 3 NA <0,1 Capitellida undet ,4 Barantolla americana 1 NA <0,1 Opheliidae undet. NA NA 0,9 Chaetozone setosa 4 4 <0,1 Arca sp. 1 NA 0,6 Pectinaria koreni 4 4 <0,1 Lumbrineris funchalensis 2 NA 0,6 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Spionida undet ,6 Lacuna vincta 2 NA <0,1 Ampharete finmarchica 1 2 0,5 Thyasira ferruginea 2 NA <0,1 Sabellida undet ,3 Yoldiella frigida 1 3 <0,1 Sabatieria pulchra 5 NA 0,2 Nucula nucleus 1 NA <0,1 Polychaeta undet. NA NA 0,2 Nothria conchylega 2 NA <0,1 Abra nitida 3 3 0,2 Mytilus edulis 3 4 0,2 Modiolus modiolus 1 1 0,2 Ophiuroidea undet ,2 8

22 JP/TC/KC Comments: The species lists for both markers are not the same due to the specificity of each marker. The 18S marker is known to target particularly meiofaunal groups, such as nematodes, while the COI marker shows more specificity to annelids, echinoderms, and molluscs. Both markers are complementary. The taxonomic resolution of COI marker is higher than the 18S, which means that the COI sequences can be easier identified to species level. However, the 18S marker has larger taxonomic range, which means more species can be detected in edna samples. The analysis of edna data does not allow to infer the number of specimens present in the grab samples, as provided by classical macrofauna benthic monitoring. In particular, the large-sized macrofaunal species are represented in DNA extracts only by tissue fragments, cells and their organelles, or extracellular DNA molecules. Nevertheless, it has been shown by several studies that the edna datasets have semi-quantitative character and that the relative frequency of sequences corresponds relatively well to the abundance of the taxon (Lejzerowicz et al. 2015). References Cordier T, Esling P, Lejzerowicz F, Visco J, Ouadahi A, Martins C, Cedhagen T, Pawlowski J. (2017) Predicting the Ecological Quality Status of Marine Environments from edna Metabarcoding Data Using Supervised Machine Learning. Environ Sci Technol. 51(16): Cordier T, Forster D, Dufresne Y, Martins CIM, Stoeck T, Pawlowski J. (2018) Supervised machine learning outperforms taxonomy-based environmental DNA metabarcoding applied to biomonitoring. Mol Ecol Res (in press) Lejzerowicz F, Esling P, Pillet LL, Wilding T a., Black KD, Pawlowski J (2015) High-throughput sequencing and morphology perform equally well for benthic monitoring of marine ecosystems. Sci Rep 5:13932 Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cedhagen T, Wilding TA (2014) Environmental monitoring through protist nextgeneration sequencing metabarcoding: Assessing the impact of fish farming on benthic foraminifera communities. Mol Ecol Resour 14: Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cordier T, Visco JA, Martins CIM, Kvalvik A, Staven K, Cedhagen T (2016) Benthic monitoring of salmon farms in Norway using foraminiferal metabarcoding. Aquac Environ Interact 8: Pochon X, Wood SA, Keeley NB, Lejzerowicz F, Esling P, Drew J, Pawlowski J. (2015) Accurate assessment of the impact of salmon farming on benthic sediment enrichment using foraminiferal metabarcoding. Mar Pollut Bull. 100(1): Stoeck T, Kochems R, Forster D, Lejzerowicz F, Pawlowski J. (2018) Metabarcoding of benthic ciliate communities shows high potential for environmental monitoring in salmon aquaculture. Ecol. Indicators 85: Stoeck T, Frühe L, Forster D, Cordier T, Martins CIM, Pawlowski J. (2018) Environmental DNA metabarcoding of benthic bacterial communities indicates the benthic footprint of salmon aquaculture. Marine Pollution Bulletin 127:

23 JP/TC/KC Annex. Total Nordbotn lists of macro- and meiofaunal taxa and their relative frequencies in the edna datasets of each station. The ecological groups (EG) AMBI and NSI are indicated if available, otherwise NA is marked. The pollution indicator species classified in EG 5 are marked in red. The taxa are ranked according to their relative frequencies within the total edna dataset of either COI or 18S marker. COI marker - Nordbotn Ecological group Relative frequency Taxon AMBI NSI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 ASC Ref.1 Paramphinome jeffreysii 3 3 NA 1,4 NA 69,7 16,1 0,5 ASC Ref.2 Corymorpha nutans 1 NA 0,2 NA 0,1 NA NA 62,3 Pholoe baltica 1 3 0,2 13,9 0,2 0,9 0,5 30,9 Cephalothrix iwatai 3 NA NA 10,2 3,5 26,3 NA NA Barantolla americana 1 NA <0,1 44 0,4 <0,1 19,5 <0,1 Arenicola marina 3 NA 78,3 0,2 64,8 NA NA <0,1 Abra nitida 3 3 NA 20,8 NA <0,1 3,8 NA Mugga wahrbergi 2 2 <0,1 2,4 0,1 1 27,8 0,7 Chaetoderma nitidulum 2 2 NA 4,2 NA NA 28 0,1 Chaetozone setosa ,9 NA 3 0,3 NA <0,1 Ophiura sarsii 2 2 0,1 NA NA <0,1 NA 3,7 Priapulus caudatus 3 3 NA 1,3 0,1 1,4 0,8 NA Balanus balanus NA NA <0,1 NA NA NA NA 1,2 Pectinaria koreni 4 4 2,2 NA 20,9 <0,1 NA <0,1 Melinna albicincta 3 2 NA 1,2 NA NA NA NA Nereimyra punctata 3 4 NA NA 0,2 <0,1 NA 0,4 Obelia geniculata 2 NA <0,1 0,1 1,9 <0,1 1,9 <0,1 Ophryotrocha maculata NA NA 0,9 <0,1 1,5 NA NA NA Anthozoa undet. 2 1 NA NA NA 0,2 NA NA Scalibregma sp. 3 NA NA NA NA NA 1,4 NA Lacuna vincta 2 NA NA 0,2 NA <0,1 NA <0,1 Retusa umbilicata 2 NA NA 0,1 NA NA NA NA Evadne nordmanni NA NA NA <0,1 2,1 <0,1 NA NA Thyasira ferruginea 2 NA NA NA NA <0,1 <0,1 <0,1 Yoldiella frigida 1 3 NA <0,1 NA <0,1 NA <0,1 Ophelina acuminata 1 3 <0,1 NA 1,3 NA NA NA Nucula nucleus 1 NA <0,1 NA NA NA <0,1 <0,1 Nothria conchylega 2 NA NA NA NA <0,1 <0,1 <0,1 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 <0,1 <0,1 NA NA <0,1 NA Ophryotrocha scutellus 4 4 <0,1 <0,1 NA NA NA NA Nereimyra woodsholea 3 NA NA NA 0,1 NA <0,1 NA Euspira montagui 2 2 <0,1 NA NA NA NA NA Galathowenia oculata 3 3 NA NA NA <0,1 <0,1 NA Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 NA 0,1 NA NA NA Ophryotrocha cyclops 4 4 <0,1 <0,1 NA NA NA NA Pectinaria auricoma 1 2 <0,1 NA NA NA NA NA i

24 18S V1V2 marker - Nordbotn Ecological group Relative frequency Taxon AMBI NSI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 JP/TC/KC ASC Ref.1 Capitellida undet ,5 18,8 4,6 1,6 35,2 1,4 ASC Ref.2 Pholoe baltica 1 3 NA 26,5 NA 14,8 0,1 20,9 Nucula sulcata 1 2 1,4 NA NA 10,9 NA 31 Phyllodocida undet. NA 2 2,9 2,9 0,7 3,6 23,9 4,3 Capitella sp ,5 0,2 50,2 NA NA NA Lepidonotus sublevis 2 NA NA 0,2 19,1 26,8 NA NA Golfingiida undet. 1 NA NA NA NA NA 17,4 NA Anobothrus gracilis 3 2 0,5 5,9 NA 0,5 3,7 6,9 Sabatieria pulchra 5 NA 29,7 NA 9,9 NA NA 0,2 Maldane sarsi 2 4 NA 15,2 NA NA 3,4 NA Amphioplus daleus 2 NA NA NA NA 0,3 NA 13 Corymorpha nutans 1 NA 0,5 NA NA NA 0,1 12,1 Paraonidae undet. 2 NA NA 6,6 NA NA 5,9 NA Polychaeta undet. NA NA 26,8 NA 3,3 0,3 0,3 0,2 Cephalothrix filiformis 3 NA NA 3,2 NA 11,9 NA NA Terebellida undet. NA NA NA 2 NA NA 2 4,4 Thyasira sarsi 3 4 5,3 0,2 6,6 1,8 NA NA Paramphinome jeffreysii 3 3 NA 0,5 NA 6 1,3 NA Eunicida undet. NA NA NA 0,5 NA 4,9 0,3 1,5 Retusa sp. NA NA NA 4,3 NA NA 1,4 NA Priapulus caudatus 3 3 NA 0,7 NA 6,5 NA NA Pherusa plumosa 3 3 NA 4,1 NA NA 1 NA Opheliidae undet. NA NA NA 1,1 NA 2,1 0,4 0,9 Sabellida undet. 1 2 NA 1,1 NA 3,1 0,4 0,3 Eteone longa 3 4 NA 1,8 3,6 NA NA NA Nematoda undet. 3 NA 7,2 NA NA NA NA NA Holothuroidea undet. 1 NA NA NA 1,3 NA 1,4 NA Arca sp. 1 NA NA 1,1 NA 0,5 0,3 0,6 Lumbrineris funchalensis 2 NA NA 1,8 NA NA NA 0,6 Spionida undet. 3 3 NA 0,5 0,3 0,8 0,3 0,6 Mugga wahrbergi 2 2 NA 0,2 NA 1 0,6 NA Phascolion strombus 1 2 2,9 NA NA 0,3 NA NA Abra nitida 3 3 NA NA NA 0,8 NA 0,2 Mytilus edulis 3 4 0,5 0,5 NA NA NA 0,2 Ampharete finmarchica 1 2 NA NA NA NA NA 0,5 Apistobranchus typicus 1 NA NA NA NA 0,5 NA NA Modiolus modiolus 1 1 0,5 NA NA NA NA 0,2 Neoleanira tetragona 2 3 NA NA NA NA 0,3 NA Ophiuroidea undet. 2 2 NA NA NA 0,3 NA 0,2 Spiophanes kroyeri 3 3 NA NA NA NA 0,3 NA Tharyx sp. 4 3 NA 0,2 NA NA 0,1 NA Diplocirrus glaucus 1 2 NA NA NA 0,3 NA NA ii

25 JP/TC/KC Syllis ferrani 2 NA NA NA 0,3 NA NA NA Terebellides stroemii 2 2 NA NA NA 0,3 NA NA Yoldiella orcia 1 1 NA NA NA 0,3 NA NA iii

26 Rapport Side 1 (4) N T0YZVB2BDD Mottatt dato Akvaplan-niva AS Utstedt Ingar H. Wasbotten Prosjekt Bestnr Framsenteret N-9296 Tromsø Norway Analyse av sediment Deres prøvenavn _ASC1 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC2 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC3 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC4 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

27 Rapport Side 2 (4) N T0YZVB2BDD Deres prøvenavn _ASC5 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC6 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

28 Rapport Side 3 (4) N T0YZVB2BDD "a" etter parameternavn indikerer at analysen er utført akkreditert ved ALS Laboratory Group Norway AS. "a ulev" etter parameternavn indikerer at analysen er utført akkreditert av underleverandør. "*" etter parameternavn indikerer uakkreditert analyse. Utførende laboratorium er oppgitt i tabell kalt Utf. n.d. betyr ikke påvist. n/a betyr ikke analyserbart. < betyr mindre enn. > betyr større enn. Metodespesifikasjon 1 Analyse av metaller (enkeltelementer) Metode: EPA 200.7, ISO 11885, EPA 6010 og SM 3120 Måleprinsipp: ICP AES Prøve forbehandling: Prøven homogeniseres og mineraliseres med HNO3 i en autoklav under høyt trykk og temperatur før analyse. Rapporteringsgrenser: Fe 3 mg/kg TS V 0,1 mg/kg TS Cu 0,1 mg/kg TS Co 0,1 mg/kg TS Cr 0,25 mg/kg TS Cd 0,1 mg/kg TS Be 0,01 mg/kg TS Ba 0,2 mg/kg TS As 0,5 mg/kg TS Sb 0,5 mg/kg TS Sr 0,1 mg/kg TS Ni 5 mg/kg TS Mo 0,4 mg/kg TS Hg 0,2 mg/kg TS Mn 0,5 mg/kg TS Li 1 mg/kg TS Pb 1 mg/kg TS Zn 1 mg/kg TS P 5 mg/kg TS Måleusikkerhet: 20% JIBJ Godkjenner Jan Inge Bjørnengen Utf 1 1 Ansvarlig laboratorium: ALS Laboratory Group, ALS Czech Republic s.r.o, Na Harfě 9/336, Praha, Tsjekkia Lokalisering av andre ALS laboratorier: Ceska Lipa Pardubice Bendlova 1687/7, Ceska Lipa V Raji 906, Pardubice Kontakt ALS Laboratory Group Norge, for ytterligere informasjon 1 Utførende teknisk enhet (innen ALS Laboratory Group) eller eksternt laboratorium (underleverandør). ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

29 Rapport Side 4 (4) N T0YZVB2BDD Utf 1 Måleusikkerheten angis som en utvidet måleusikkerhet (etter definisjon i "Evaluation of measurement data Guide to the expression of uncertainty in measurement, JCGM 100:2008 Corrected version 2010) beregnet med en dekningsfaktor på 2 noe som gir et konfidensinterval på om lag 95%. Måleusikkerhet fra underleverandører angis ofte som en utvidet usikkerhet beregnet med dekningsfaktor 2. For ytterligere informasjon, kontakt laboratoriet. Måleusikkerhet skal være tilgjengelig for akkrediterte metoder. For visse analyser der dette ikke oppgis i rapporten, vil dette oppgis ved henvendelse til laboratoriet. Denne rapporten får kun gjengis i sin helhet, om ikke utførende laboratorium på forhånd har skriftlig godkjent annet. Resultatene gjelder bare de analyserte prøvene. Angående laboratoriets ansvar i forbindelse med oppdrag, se aktuell produktkatalog eller vår webside Den digitalt signert PDF-fil representerer den opprinnelige rapporten. Eventuelle utskrifter er å anse som kopier. ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør