ASC - undersøkelse ved Steinflesa i Leka kommune, januar/ mars 2018

Transkript

1 2018 ASC - undersøkelse ved Steinflesa i Leka kommune, januar/ mars 2018 Marine Harvest Norway Region Nord Etter ASC Salmon Standard v1.1 AQUA KOMPETANSE AS ASC STEINFLESA

2 Aqua Kompetanse AS Storlavika Flatanger Mobil: E - post: post@aqua - kompetanse.no Internett: - kompetanse.no Bankgiro: Org. Nr.: Rapportens tittel: ASC - undersøkelse ved Steinflesa i Leka kommune, januar og mars 2018 Forfatter : Marthe Austad Feltdato: & Toktleder: Marthe Austad & Vidar Strøm Rapportdato: Rapportnu mmer: ASC Antall sider uten vedlegg : 11 Antall sider totalt: 24 Oppdragsgiver: Marine Harvest Norway Region Nord Kontaktperson: Jonathan Vaz Lokalitet: Steinflesa Lokalitetsnummer: Driftsleder: Dag Kristian Skarstad Koordinater: N Ø Bakgrunn for undersøkelse: ASC sertifisering Stasjoner m riu rite K Fylke: Trøndelag Kommune: Leka MTB tillatelse: tonn Antall merder: 12 Merdomkrets: - Innenfor AZE Utenfor AZE ASC1 ASC2 ASC3 ASC Ikke målt 373 mv Bestått Bestått H = 3,68 ± 0, 4 AMBI = 2,54 ± 0,35 H = 3,85 ± 0,15 AMBI = 2,41 ± 0, mg/kg 25 mg/kg Rapportansvarlig: Kvalitetssikrer: Marthe Austad Emneord: Christine Klykken Miljøanalyse; sediment; bunndyrsanalyser; redoks; prø vetaking; ASC; Salmon Standard ID Rapporten er tilgjengelig ved forespørsel 2018 Aqua Kompetanse AS. Kopiering av rapporten kan kun skje i sin helhet. Dersom deler av rapporten (konklusjoner, figurer, tabeller, bilder eller annen gjengivelse) er ønskelig, er dette kun tillatt etter skriftlig samtykke fra Aqua Kompetanse AS ASC STEINFLESA AQUA KOMPE TANSE AS 2

3 Innholdsfortegnelse 1. Materiale og metode Undersøkelsesområde Stasjonsplassering Innsamlingsmetode edna Kobberanalyser Redokspotensial Vurdering etter ASC Salmon Standard Kriterium Kriterium Kriterium Kriterium Resultater Redokspotensial og ASC Kriterium Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Kobberanalyse og ASC Kriterium Referanser Vedlegg A edna-rapport ID-Gene Vedlegg B Kobberanalyser Kystlab AS ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 3

4 1. Materiale og metode Aqua Kompetanse AS har gjennomført feltarbeid for å innhente pr øvemateriale for oppdragsgiver Marine Harvest Norway Region Nord. Pr øvetaking og stasjonsplassering ble utført i henhold til metodikk beskrevet i ASC Salmon Standard V 1.1, NS - EN ISO 16665: 2013 og NS - EN ISO 5667:2004 av Marthe Austad den og Vidar Strøm den fra Aqua Kompetanse AS. ID - Gene har stått fo r g enetiske analyser (edna) av sedimentprøvene, og beregning av diversitetsindekser basert på RNA - markøren 18S V1V2. Kystlab AS har stått for kobberanalyser. 1.1 Undersøkelsesområde Lokaliteten Steins flesa ligger ved holmegruppa Steinsflesan, nordvest fo r Leka. Anlegget ligger over en skråning som går fra Steinsflesan og ut i dypområdet mellom Steinsflesan og Leka. Dybden under anlegget går fra 85 meter på det grunneste øverst i skråningen og til 220 meter på det dypeste ut mot dypområdet, og det er i hov edsak hardbunn i form av fjell eller stein med noe skjellsand (Austad, 2018). Figur 1 gir en oversikt over lokaliteten i forhold til andre anlegg. Figur 1 : Oversiktskart som viser anleggsplassering (markert i rødt og grønt) og u ndersøkelsesområdet. Målestokk 1: Kilde: Fiskeridirektoratets karttjeneste. 1.2 Stasjonsplassering ASC definerer et område rundt anlegget hvor det er tillatt med en viss påvirkning fra oppdrettsvirksomheten. Dette området kalles AZE Allowable Zo ne of Effect -, og er definert i ASC Salmon Standard V 1.1 som 30 meter fra merd. Ved prøvetaking skal det legges stasjoner både innenfor og utenfor AZE, fortrinnsvis én stasjon med hovedstrømretningen og én mot hovedstrømretningen både innenfor og utenfor AZE ASC STEINFLESA AQUA KOMPE TANSE AS 4

5 Prøvestasjonene ble tatt ved samme koordinat som ASC-undersøkelsen i 2015 (Strøm, 2016), og representerer de samme områdene. Prøvestasjonene ASC1 og ASC2 ligger innenfor AZE, henholdsvis nord og sør langs den østlige langsiden av anlegget. Utenfor AZE ble ASC3 og ASC4 plassert henholdsvis 295 meter nordøst og 292 meter sørøst fra anlegget. Referansestasjonen ble lagt i underkant av 2 km sørvest fra anlegget. Figur 2 viser stasjonenes plassering i forhold til anlegget, mens Tabell 1 gir stasjonskoordinater og øvrig informasjon i forhold til plassering. Figur 2: Kartet viser anleggsplassering sammen med ASC-stasjoner og fortøyningsliner. Lilla pil viser orientering av kart. Tabell 1: Oversikt over stasjonene plassering i forhold til AZE, stasjonsdyp og avstand til anlegg. Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon Stasjoner ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref Feltdato N N N N N Koordinater Ø Ø Ø Ø Ø Dybde (m) Avstand til anlegg (m) Innsamlingsmetode Makrofauna (bunndyr) og sedimentprøver ble samlet inn ved hjelp av en 0.1 m² Van Veen-grabb, og på hver prøvestasjon ble det foretatt to grabbhugg. Ved hvert hugg ble det tatt ut 2 x 5 ml overflatesediment fra ulike steder gjennom topplukene på grabben. Sedimentene ble tatt ut ved hjelp av sterile skjeer, og overført til prøverør tilsatt 10 ml Life Guard TM RNA buffer. Engangshansker ble benyttet ved prøvetaking for å unngå genetisk kontaminering. Ved hver stasjon ble det også tatt ut ml sediment til kobberanalyser. Sedimentprøvene ble fryst ned frem til analyse. Ved hver stasjon ble det også målt redokspotensial edna For metodebeskrivelse av genetiske analyser (edna) se rapport fra ID-Gene i Vedlegg A ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 5

6 1.3.2 Kobberanalyser For metodehenvisning vedrørende kobberanalyser se rapport fra Kystlab AS i Vedlegg B Redokspotensial E h (redokspotensial; reduksjons-oksidasjonslikevekter) ble målt i overflatesedimentet (ca. 1 cm ned) ved bruk av HQ40d multimeter og tilhørende redokselektrode (MTC101). Det ble også målt sedimenttemperatur og E obs i overflatevannet ved lokaliteten. I atmosfærisk ekvilibrert overflatevann ligger E h på rundt 400 mv, mens anoksiske vannmasser og sedimenter vil ha E h ned mot -200 mv. E h (redokspotensial) bestemmes ut fra det observerte hvilepotensialet i prøven (målt verdi; E obs) og standardpotensialet til referanseelektroden (E ref; Tabell 2):! " # $! %&' ($! )*+ Tabell 2: Standardpotensiale til referanseelektrode. Tilpasset fra MTC101 brukermanual (Hach Company, 2014). Temperatur ( C) Standardpotensiale i mv (E ref) 0,0 4, ,0 9, ,0 14, ,0 19, Vurdering etter ASC Salmon Standard Aqua Kompetanse AS vurderer lokaliteten ut fra fire ASC kriteria for biodiversitet og bentiske effekter og ikketerapeutiske kjemikalier (kobber) fra akvakulturanlegg. Vurderingene fremstilles i tekst og med fargekode for bestått/ikke bestått kriterium, hhv. grønn og rød Kriterium Redokspotensialet i sedimentene utenfor AZE skal være > 0 mv Kriterium Biodiversitetsindeksene skal vise god eller høy økologisk kvalitet i sedimentet utenfor AZE. Dette bestemmes ut fra AZTI Marine Biotic Index (AMBI) eller Shannon-Wiener Index (H ), hvor AMBI skal være 3,3, eller H > 3, Kriterium Innenfor AZE skal det være 2 tallrike taksa som ikke er forurensningsindikatorer 1. Med tallrike taksa menes mer enn 100 individer per m 2, og forurensningsindikatorer er basert på økologiske grupper (EG) som beskrevet i Rygg og Norling (2013): EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer. Ved bruk av edna er det ikke mulig å kvantifisere individtall, og kriterium baseres derfor på relativ frekvens av forurensningsindikatorer mot ikkeforurensningsindikatorer. Tilstedeværelsen av flere arter tilhørende EG I IV sett opp mot lav relativ frekvens av forurensningsindikatorer vil gi en indikasjon på at kriteriet er bestått. 1 Dersom det er naturlig lave individtall (< 100 per m 2 ) i området skal dette sammenlignes med resultater fra referansestasjonen, og bedømmes ut fra hvor my lavere individtallet er innenfor AZE enn ved referansestasjonen ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 6

7 1.4.4 Kriterium Kobbernivåene i sedimentene er < 34 mg/kg i tørrvekt 2 utenfor AZE. Uttak av sedimentprøver til kobberanalyser ved felt, og resultater i foreliggende rapport gir nødvendig bevis til ASC Kriterium Resultater 2.1 Redokspotensial og ASC Kriterium Det ble malt høy redoks ved ASC1, ASC4 og referansestasjonen. Ved ASC2 og ASC3 var sedimentet for grovt til at det var mulig å måle. Utenfor AZE var det derfor kun ASC4 som hadde målinger, men denne stasjonen hadde Eh > 0, og Steinflesa består derfor ASC kriterium for denne stasjonen. Tabell 4 viser resultatene fra målingene i felt (E obs) og utregnet redokspotensiale E h (E obs + E ref), i tillegg til fremstilling av bestått/ikke bestått ASC Kriterium Tabell 3: Resultater fra målinger i overflatevannet, sedimenttemperatur, og standardpotensiale E ref basert på sedimenttemperatur ved Steinflesa. E h i sjø er ikke kalkulert. Målingene er fra og , respektivt. Sedimenttemperatur: 3,5 C / 2,0 C E ref sediment: 224 / 224 Sjøtemperatur: 5 C / 4,5 C E obs sjø: 250 / 189 Tabell 4: Resultater fra redoksmålinger ved Steinflesa. Eobs = observert hvilepotensial i prøven (målt verdi); E h = redokspotensial, bestemt ut fra E obs og E ref (E h = E obs + E ref; Tabell 2). Drift i redoksmålingene (E obs) markeres med pil. Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon Stasjoner ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref E obs (mv) E h (E obs + E ref) ASC Kriterium E h > 0 mv Bestått 2.2 Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Innenfor AZE ble det funnet flere arter med 18S V1V2-markøren som er klassifisert som indikatorarter etter AMBI; Nematoden Sabatieria pulchra, flerbørstemarkene (polychaeta) Malacoceros fuliginosus, Capitella sp. og Capitellida indet., og fåbørstemarken (oligochaeta) Tubificoides benedii. Capitella sp. og Capitellida indet. ble også funnet ved ASC3 og ASC4 utenfor AZE. De mest påvirkede stasjonene var ASC1 og ASC2, med neqr på 0,338 0,356 og økologisk tilstands IV «dårlig» basert på 18S V1V2-markøren. De øvrige stasjonene, ASC3 og ASC4, fikk økologisk tilstand II «god» med neqr på henholdsvis 0,696 og 0,712. Referansestasjonen fikk også økologisk tilstand II «god», med neqr = 0,746. Det ble funnet ikke-indikatorarter ved alle stasjonene, og tilstedeværelsen av arter tilhørende EG I IV, og lav til moderat relativ frekvens av forurensningsindikatorer tilsier at Steinflesa består kriterium (se ID-Gene rapport i Vedlegg A for fullstendig vurdering). 2 Dersom kobbernivåene i sedimentet utenfor AZE er > 34 mg/kg sammenlignes resultatene med verdier fra referansestasjon for å se om nivåene utenfor AZE sammenfaller med nivåene ved referansestasjon. Dersom det finnes tidligere undersøkelser med kobberuttak kan dette også brukes for å gjøre en vurdering av tilstand ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 7

8 Tabell 5: Tabellen viser identifisert makro- og meiofauna fra stasjonene innenfor AZE ved Steinflesa basert på relativ frekvens for 18S V1V2 og COI markører. Økologiske grupper i AMBI* og NSI indeksene er også gitt der de er tilgjengelig. Forurensningsindikatorarter (AMBI og NSI økologisk gruppe V) er markert med rødt. Tabellen er tilpasset etter Tabell 3 i rapport fra ID-Gene i Vedlegg A. ASC1 ASC2 Relativ frekvens Økologisk gruppe Relativ frekvens Økologisk gruppe Taksa 18S 18S COI AMBI NSI V1V2 Taksa V1V2 COI AMBI NSI Ophryotrocha cyclops 0 53,9 IV 4 Paramphinome jeffreysii 0,9 49,2 III 3 Ophryotrocha craigsmithi 0 42,9 IV 4 Ophryotrocha scutellus 0 35 IV 4 Ophryotrocha scutellus 0 3,1 IV 4 Ophryotrocha craigsmithi 0 12,3 IV 4 Pholoe baltica 0 <0,1 I 3 Ophryotrocha cyclops 0 3,3 IV 4 Mugga wahrbergi 9,2 <0,1 II 2 Pholoe baltica 0 <0,1 I 3 Chaetoderma nitidulum 0 <0,1 II 2 Coryomorpha nutans 13,9 <0,1 I Ik Chaetozone setosa 0 <0,1 IV 4 Pectinaria koreni 0 <0,1 IV 4 Opheline acuminata 0 <0,1 I 3 Leuckartiara octona 0 <0,1 I Ik Capitellida indet. 35,2 0 V 3 Arenicola marina 0 <0,1 III Ik Capitella sp. 21,7 0 V 3 Malacoceros fuliginosus <0,1 <0,1 V 5 Thyasira sarsi 17,7 0 III 4 Ophryotrocha maculata 0 <0,1 Ik Ik Ciona intestinalis 4,2 0 III Ik Barantolla americana 0 <0,1 I Ik Polychaeta indet. 3,5 0 Ik Ik Scalibregma sp. 0 <0,1 III Ik Sabatieria pulchra 2 0 V Ik Mytilus edulis 79,5 0 III 4 Spionida indet. 1,8 0 III 3 Anticoma sp. 2 0 III Ik Corymorpha nutans 1,3 0 I Ik Sabatieria pulchra 1,3 0 V Ik Holothuroidea indet. 1,3 0 I Ik Capitellida indet. 0,9 0 V 3 Ascidiella sp. 0,9 0 III Ik Tubificoides benedii 0,8 0 V Ik Paramphinome jeffreysii 0,4 0 III 3 Thyasira sarsii 0,2 0 III 4 Sabellides octocirrata 0,4 0 II 1 Paradiopatra fiordica 0,2 0 I 3 Lepidonotus sublevis 0,2 0 II Ik Phyllodocida indet. 0,1 0 Ik 2 Hiatella arctica 0,2 0 I 1 Eunicida indet. 0,1 0 Ik Ik Capitella sp. 0,1 0 V 3 Mugga wahrbergi >0,1 0 II 2 Holothuroidea indet. >0,1 0 I Ik Lepidonotus sublevis >0,1 0 II Ik Ascidiella sp. >0,1 0 III Ik Hiatella arctica >0,1 0 I 1 Spionida indet. >0,1 0 III 3 Sabellides octocirrata >0,1 0 II 1 Bougainvillia sp. >0,1 0 Ik Ik Scalibregma sp. inflatum >0, Lucinoma borealis >0, ASC ref Relativ frekvens Økologisk gruppe Taksa 18S V1V2 COI AMBI NSI Obelia geniculata 0 71,1 II Ik Obelia dichotoma 0 23,2 II Ik Harmothoe imbricata 0 2,5 II Ik Corymorpha nutans 0,3 1,2 I Ik Mugga wahrbergi 0,8 0,7 II 2 Orthopyxis integra 0 0,7 I Ik Paramphinome jeffreysii <0,1 0,3 III ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 8

9 Tabell 5 forts. ASC ref Relativ frekvens Økologisk gruppe Taksa 18S V1V2 COI AMBI NSI Yoldiella frigida 0 0,1 I 3 Nereimyra punctata 0 0,1 III 4 Grania pusilla 0 <0,1 Ik Ik Paradiopatra quadricuspis 0 <0,1 I 1 Nereimyra woodsholea 0 <0,1 III Ik Pholoe baltica 0 <0,1 I 3 Myxina glutinosa 0 <0,1 Ik Ik Arenicola marina 0 <0,1 III Ik Nothria conchylega 0 <0,1 II Ik Laonice cirrata 0 <0,1 III 1 Melinna albicincta 0 <0,1 III 2 Neoleanira tetragona 0,1 <0,1 II 3 Phyllodocida indet. 38,1 0 Ik 2 Arca sp. 27,1 0 I Ik Sphaerodoridium fauchaldi 9,5 0 II Ik Onchnesoma steenstrupii 6,6 0 I 1 Holothuroidea indet. 6,1 0 I Ik Terebellida indet. 2,5 0 Ik Ik Pseudomystides limbata 1,8 0 II Ik Lepidonotus sublevis 1,6 0 II Ik Capitellida indet. 1,2 0 V 3 Phascolion strombus 1,1 0 I 2 Crustacea indet. 0,8 0 I Ik Hiatella arctica 0,5 0 I 1 Yoldiella orcia 0,4 0 I 1 Ascidiella sp. 0,3 0 III Ik Pholoe baltica 0,2 0 I 3 Ciona intestinalis 0,2 0 III Ik Spiophanes kroyeri 0,1 0 III 3 Sige fusigera 0,1 0 III 3 Thyasira sarsi 0,1 0 III 4 Opheliidae indet. 0,1 0 Ik Ik Spionida indet 0,1 0 III 3 Pherusa plumosa 0,1 0 III 3 Ophiuroidea indet. >0,1 0 II 2 Ectopleura larynx >0,1 0 I Ik Bougainvillia sp. >0,1 0 Ik Ik Leuckartiara octona <0,1 0 I Ik Cephalotrix filiformis >0,1 0 III Ik Meganyctiphanes norvegica <0,1 0 I Ik Micrura sp. <0,1 0 I Ik *Økologiske grupper: EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer (Rygg og Norling, 2013). Ik = ikke kjent gruppe ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 9

10 Tabell 6: Resultater fra edna-analyser, med antall arter funnet ved bruk av COI og 18S V1V2 markørene ved hver stasjon, samt indeks-score for Shannon-Wiener (H ) og AMBI, og resultater for ASC kriterium og ved Steinflesa. Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon Stasjoner ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref Antall arter Shannon-Wiener (H ) 1,76 ± 0,11 1,94 ± 0,29 3,68 ± 0,4 3,85 ± 0,15 4,22 ± 0,09 ASC Kriterium H > 3,0 Bestått Bestått AMBI 5,11 ± 0,2 4,99 ± 0,2 2,54 ± 0,35 2,41 ± 0,07 2,23 ± 0,1 ASC Kriterium AMBI 3,3 Bestått Bestått ASC Kriterium Bestått Bestått 2.3 Kobberanalyse og ASC Kriterium Kobberanalysene fra Steinflesa viser at det er opphopning av kobber i sedimentene sør i anlegget (se Figur 2 og Tabell 1), innenfor AZE. De øvrige stasjonene viste ikke betydelig opphopning i forhold til referansestasjonen, og utenfor AZE var kobbernivåene < 34 mg Cu/kg. Steinflesa består derfor ASC kriterium Tabell 7: Resultater fra kobberanalysene som ble utført ved Steinflesa, samt resultat for ASC kriterium Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon Stasjoner ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref Cu mg/kg ASC Kriterium < 34 mg CU/kg Bestått Bestått ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 10

11 Referanser Aquaculture Stewardship Council (2017) ASC Salmon Standard V1.1. Austad, M. (2018) B-undersøkelse ved Steinflesa i Leka kommune, januar Rapportnummer B levert av Aqua Kompetanse AS. Hach Company (2014) User Manual gel filled ORP/Redox Probe: Model MTC10101, MTC10103, MTC10105, MTC10110, MTC10115 or MTC doc Edition 4. Norsk Standard (2004). Vannundersøkelse. Prøvetaking. Del 19: Veiledning i sedimentprøvetaking i marine områder (ISO 5667:2004). Standard Norge. NS-EN ISO : Norsk Standard (2013) Vannundersøkelse. Retningslinjer for kvantitativ prøvetaking og prøvebehandling av marin bløtbunnsfauna (ISO : 2014). Standard Norge. NS-EN ISO 16665:2013. Rygg, B. & Norling, K. (2013) Norwegian Sensitivity Index (NSI) for marine macro invertebrates, and an update of Indicator Species Index (ISI). NIVA rapport SNO Strøm, V. (2018) ASC ved Steinflesa, Leka kommune, november Rapportnummer C levert av Aqua Kompetanse AS ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 11

12 Vedlegg A ed N A - rapport I D - Gene TC/KC/JP Environmental DN A - based bioassessment of salmon farm impact on benthic biodiversity - Steinflesa Report for Aqua Kompetanse AS ( Vidar Strøm ), prep ared by Prof. Jan Pawlowski, Dr. Tristan Cordier and Mgr. Kristina Cermakova (University of Geneva & ID - GENE ecodiagnostics TM ) Summary The environmental impact of the Steinflesa farm on benthic diversity was assessed as part of ASC survey using I D - Gene ecodiagnostics TM sedimentary DNA bioassessment test. The values of biotic indices predicted using 18S marker show bad or moderate ecological status for station ASC 1 and ASC2, good status for stations ASC 3 and ASC 4, and good or very good status for station ASC Ref. The taxonomic lists of zoobenthos identified in edna datasets indicate the presence of non - pollution indicator species in all stations. This suggests that Steinflesa site complies with the criterions and of the ASC Salmon Standard. Samples 20 sediment sam ples collected by Aqua Kompetanse AS were sent to ID - Gene ecodiagnostics TM laboratory in April 24 th, The samples were collected at 5 stations in Steinflesa site (2 grabs per station, 2 replicates per grab). DNA extraction, PCR amplification and High - throughput sequencing Environmental DNA (edna) was extracted from each sediment sample and two marker regions were amplified using PCR: a nuclear (18S V1V2) marker targeting all eukaryotes and a mitochondrial (COI) marker targeting principally zoobenthos. The paired - end sequencing on a MiSeq instrum ent yielded high quality reads for 18S marker and reads for COI marker. The sequencing depth, i.e. the number of sequences per sample, averages ± for 18S and ± for COI ASC STEINFLESA AQUA KOMPE TANSE AS 12

13 TC/KC/JP B iotic indices The values of six biotic indices (AM BI, NSI, N QI 1, ISI, Shannon and neqr) have been predicted from the 18S V1V2 edn A sequence data using our predictive model trained on others salmon farms in Norway, for which the ecological status of samples was known (C ordier et al., 2017, Cordier et al., 2018). The biotic indices values were predicted for each replicate and the four values (2 replicates x 2 grabs per station) were averaged into a final predicted value for each station (Table 2). Table 1. Threshold val ues of different indices corresponding to the ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad) Ecological status Very good Good Moderate Bad Very bad Shannon 4,8-5,7 3,0-4,8 1,9-3,0 0,9-1,9 0-0,9 AMBI 0-1,2 1,2-3,3 3,3-4,3 4,3-5,5 5,5-6 NSI NQI1 0,82-0,9 0,63-0,82 0,49-0,63 0,31-0,49 0-0,31 ISI 9, < 4.5 neqr 0, ,2 Table 2. The values of AM BI, N SI, ISI, NQI1, Shannon and neqr predicted from edna data. The colours correspond to ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad). The ± sign indicates standard deviation. Steinflesa ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC Ref. AMBI 5.11± ± ± ± ±0.1 NSI 11.6± ± ± ± ±0.08 ISI 6.87± ± ± ± ±0.13 NQI1 0.38± ± ± ± ±0 Shannon 1.76± ± ± ± ±0.09 neqr 0.338± ± ± ± ± ASC STEINFLESA AQUA KOMPE TANSE AS 13

14 TC/KC/JP Taxonomic composition Zoobenthos list was created for each station based on 18S and COI edn A sequences assigned to macro - and meiofauna. In Table 3, the taxa are listed with their relative frequencies within the 18S and COI edn A datasets of each station separately. AM BI and N SI ecological groups, as defined in the reference paper of Rygg and Norling (2013), are also indicated. The zoobenthos lists are summarized i n annex, with taxa ranked according to their relative frequencies within the total edn A datasets of COI and 18S markers. Table 3. List of macro - and meiofauna l taxa and their relative frequencies in the edn A datasets of each station for 18S and COI markers. The ecological groups (EG) AM BI and N SI are indicated if available, otherwise N A is marked. The pollution indic ator species classified in EG 5 are marked in r ed. Steinflesa ASC 1 (COI) Steinflesa ASC 1 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Op hryotrocha cyclops ,9 Capitellida undet ,2 Ophryotrocha craigsmithi ,9 Capitella sp ,7 Ophryotrocha scutellus 4 4 3,1 Thyasira sarsi ,7 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 9,2 Mugga wahrbergi 2 2 <0,1 Ciona intestinalis 3 NA 4,2 Chaetoderma nitidulum 2 2 <0,1 Polychaeta undet. NA NA 3,5 Chaetozone setosa 4 4 <0,1 Sabatieria pulchra 5 NA 2 Ophelina acuminata 1 3 <0,1 Spionida undet ,8 Corymorpha nutans 1 NA 1,3 Holothuroidea undet. 1 NA 1,3 Ascidiella sp. 3 NA 0,9 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,4 Sabellides octocirrata 2 1 0,4 Lepidonotus sublevis 2 NA 0,2 Hiatella arctica 1 1 0, ASC STEI N FLESA AQU A KOM PE TAN SE AS 14

15 TC/KC/JP Steinflesa ASC 2 (COI) Taxon Ecol. group AMBI NSI Relative frequency COI marker Steinflesa ASC 2 (18S) Taxon Ecol. group AM BI Relative frequency 18S V1V2 marker Pa ramphinome jeffreysii ,2 Mytilus edulis ,5 Ophryotrocha scutellus Corymorpha nutans 1 N A 13,9 Ophryotrocha craigsmithi ,3 Anticoma sp. 3 N A 2 Ophryotrocha cyclops 4 4 3,3 Sabatieria pulchra 5 N A 1,3 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Capitellida undet ,9 Corymorpha nutans 1 NA <0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,9 Pectinaria koreni 4 4 0,1 Tubificoides benedii 5 N A 0,8 Leuckartiara octona 1 NA <0,1 Thyasira sarsi 3 4 0,2 Arenicola marina 3 NA <0,1 Paradiopatra fiordica 1 3 0,2 Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 Phyllodocida undet. N A 2 0,1 Ophryotrocha maculata N A NA <0,1 Eunicida undet. N A N A 0,1 Barantolla americana 1 NA <0,1 Capitella sp ,1 Scalibregma sp. 3 NA <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 <0,1 N SI Holothuroidea undet. 1 N A <0,1 Lepidonotus sublevis 2 N A <0,1 Ascidiella sp. 3 N A <0,1 Hiatella arctica 1 1 <0,1 Spionida undet. 3 3 <0,1 Sabellides octocirrata 2 1 <0,1 Bougainvillia sp. N A N A <0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 Scalibregma sp. inflatum 3 3 <0,1 Lucinoma borealis 1 1 <0, ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 15

16 TC/KC/JP Steinflesa ASC 3 (COI) Steinflesa ASC 3 (18S) Ecol. group Relative Relative Ecol. group Taxon frequency frequency Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AM BI NSI marker marker Nereimyra woodsholea 3 N A 75,1 Cylichna gelida 2 NA 36,1 Parougia eliasoni NA N A 14,4 Gyptis golikovi ,6 Abra nitida 3 3 4,3 Capitellida undet ,3 Cephalothrix iwatai 3 N A 4 Holothuroidea undet. 1 NA 7,9 Mugg a wahrbergi 2 2 1,2 Nucula sulcata 1 2 6,6 Spatangus purpureus 1 1 0,5 Lumbrineris funchalensis 2 NA 4,5 Obelia geniculata 2 N A 0,2 Mugga wahrbergi 2 2 3,8 Para mphinome jeffreysii 3 3 0,1 Abra nitida 3 3 3,6 Retusa umbilicata 2 N A 0,1 Phyllodocida undet. N A 2 2,5 Ophr yotrocha cyclops 4 4 <0,1 Ascidiella sp. 3 NA 1,9 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Opheliidae undet. N A NA 1,7 Scutopus ventrolineatus 1 2 <0,1 Ciona intestinalis 3 NA 1,5 Para diopatra quadricuspis 1 1 <0,1 Retusa sp. N A NA 1,5 Ophryotrocha scutellus 4 4 <0,1 Ophiuroidea undet ,1 Lobata undet. N A NA 1,1 Eunicida undet. N A NA 0,8 Pholoe baltica 1 3 0,4 Thyasira sarsi 3 4 0,4 Lepidonotus sublevis 2 NA 0,4 Spiophanes kroyeri 3 3 0,4 Arca sp. 1 NA 0,2 Terebellida undet. N A NA 0,2 Capitella sp ,2 Paradoneis sp. 3 NA 0, ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 16

17 TC/KC/JP Steinflesa ASC 4 (COI) Taxon Ecol. group AMBI NSI Relative frequency COI marker Steinflesa ASC 4 (18S) Taxon Ecol. group AMBI Relative frequency 18S V1V2 marker Paramphinome jeffreysii ,3 Pholoe baltica ,7 Pholoe baltica Lumbrineris funchalensis 2 N A 28,7 Mugg a wahrbergi Phyllodocida undet. N A 2 26,4 Scutopus ventrolineatus 1 2 1,4 Sphaerodoridium fauchaldi 2 N A 2,5 Gran ia pusilla NA N A 1,1 Amphiporus lactifloreus 3 N A 2,4 Obelia geniculata 2 N A 0,6 Eunicida undet. N A N A 1,4 Paradiopatra quadricuspis 1 1 0,6 Amphipholis squamata 1 1 0,6 Pect inaria auricoma 1 2 0,4 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,3 Leuckartiara octona 1 N A 0,2 Gyptis golikovi 2 2 0,3 Ophr yotrocha craigsmithi 4 4 0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,1 Abra nitida 3 3 0,1 Capitellida undet ,1 Obelia dichotoma 2 N A <0,1 Onchnesoma steenstrupii 1 1 0,1 Ophr yotrocha scutellus 4 4 <0,1 Phascolion strombus 1 2 0,1 Cephalothrix iwatai 3 N A <0,1 Opheliidae undet. N A N A 0,1 Spat angus purpureus 1 1 <0,1 Corymorpha nutans 1 N A <0,1 Yoldiella frigida 1 3 <0,1 Terebellida undet. N A N A <0,1 Phylodoce groenlandica 4 3 <0,1 Holothuroidea undet. 1 N A <0,1 Ophryotrocha maculata NA N A <0,1 Thyasira sarsi 3 4 <0,1 Phylo norvegica 1 N A <0,1 Spionida undet. 3 3 <0,1 Gala thowenia oculata 3 3 <0,1 Yoldiella orcia 1 1 <0,1 N SI Pherusa plumosa 3 3 <0,1 Ophiuroidea undet. 2 2 <0,1 Ectopleura larynx 1 N A <0,1 Ampharete finmarchica 1 2 <0,1 Apistobranchus typicus 1 N A <0, ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 17

18 TC/KC/JP Steinflesa ASC Ref.( COI) Steinflesa ASC Ref.(18S) Ecol. group Relative Relative Taxon Ecol. group frequency frequency Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Obelia geniculata 2 NA 71,1 Phyllodocida undet. N A 2 38,1 Obelia dichotoma 2 NA 23,2 Arca sp. 1 N A 27,1 Harm othoe imbricata 2 NA 2,5 Sphaerodoridium fauchaldi 2 N A 9,5 Corymorpha nutans 1 NA 1,2 Onchnesoma steenstrupii 1 1 6,6 Mugg a wahrbergi 2 2 0,7 Holothuroidea undet. 1 N A 6,1 Orthopyxis integra 1 NA 0,7 Terebellida undet. N A N A 2,5 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,3 Pseudomystides limbata 2 N A 1,8 Yold iella frigida 1 3 0,1 Lepidonotus sublevis 2 N A 1,6 Nereimyra punctata 3 4 0,1 Capitellida undet ,2 Gran ia pusilla N A NA <0,1 Phascolion strombus 1 2 1,1 Paradiopatra quadricuspis 1 1 <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,8 Nereimyra woodsholea 3 NA <0,1 Crustacea undet. 1 N A 0,8 Phol oe baltica 1 3 <0,1 Hiatella arctica 1 1 0,5 Myxine glutinosa N A NA <0,1 Yoldiella orcia 1 1 0,4 Aren icola marina 3 NA <0,1 Corymorpha nutans 1 N A 0,3 Nothria conchylega 2 NA <0,1 Ascidiella sp. 3 N A 0,3 Laon ice cirrata 3 1 <0,1 Pholoe baltica 1 3 0,2 Melinna albicincta 3 2 <0,1 Ciona intestinalis 3 N A 0,2 Neoleanira tetragona 2 3 <0,1 Spiophanes kroyeri 3 3 0,2 Sige fusigera 3 3 0,1 Thyasira sarsi 3 4 0,1 Opheliidae undet. N A N A 0,1 Spionida undet ,1 Pherusa plumosa 3 3 0,1 Neoleanira tetragona 2 3 0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 <0,1 Ophiuroidea undet. 2 2 <0,1 Ectopleura larynx 1 N A <0,1 Bougainvillia sp. N A N A <0,1 Leuckartiara octona 1 N A <0,1 Cephalothrix filiformis 3 N A <0,1 Meganyctiphanes norvegica 1 N A <0,1 Micrura sp. 1 N A <0, ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 18

19 TC/KC/JP Comment s : The species lists for both markers are not the same due to the specificity of each marker. The 18S marker is known to target particularly meiofaunal groups, such as nematodes, while the COI marker shows more specificity to annelids, echinoderms, and mollus cs. Both markers are complementary. The taxonomic resolution of COI marker is higher than the 18S, which means that the COI sequences can be easier identified to species level. However, the 18S marker has larger taxonomic range, which means more species ca n be detected in edna samples. The analysis of edna data does not allow to infer the number of specimens present in the grab samples, as provided by classical macrofauna benthic monitoring. In particular, the large - sized macrofaunal species are represented in DNA extracts only by tissue fragments, cells and their organelles, or extracellular DNA molecules. Nevertheless, it has been shown by several studies that the edna datasets have semi - quantitative character and that the relative frequency of sequences c orresponds relatively well to the abundance of the taxon (Lejzerowicz et al. 2015). References Cordier T, Esling P, Lejzerowicz F, Visco J, Ouadahi A, Martins C, Cedhagen T, Pawlowski J. (2017) Predicting the Ecological Quality Status of Marine Environ ments from edna Metabarcoding Data Using Supervised Machine Learning. Environ Sci Technol. 51(16): Cordier T, Forster D, Dufresne Y, Martins CIM, Stoeck T, Pawlowski J. (2018) Supervised machine learning outperforms taxonomy - based environmental DNA metabarcoding applied to biomonitoring. Mol Ecol Res ( in press ) Lejzerowicz F, Esling P, Pillet LL, Wilding T a., Black KD, Pawlowski J (2015) High - throughput sequencing and morphology perform equally well for benthic monitoring of marine ecosystems. S ci Rep 5:13932 Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cedhagen T, Wilding TA (2014) Environmental monitoring through protist next - generation sequencing metabarcoding: Assessing the impact of fish farming on benthic foraminifera communities. Mol Ecol Resour 14: Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cordier T, Visco JA, Martins CIM, Kvalvik A, Staven K, Cedhagen T (2016) Benthic monitoring of salmon farms in Norway using foraminiferal metabarcoding. Aquac Environ Interact 8: Pochon X, Wood SA, Keeley NB, Lejzerowicz F, Esling P, Drew J, Pawlowski J. (2015) Accurate assessment of the impact of salmon farming on benthic sediment enrichment using foraminiferal metabarcoding. Mar Pollut Bull. 100(1): Stoeck T, Kochems R, Forster D, Lejzerowic z F, Pawlowski J. (2018) Metabarcoding of benthic ciliate communities shows high potential for environmental monitoring in salmon aquaculture. Ecol. Indicators 85: Stoeck T, Frühe L, Forster D, Cordier T, Martins CIM, Pawlowski J. (2018) Environment al DNA metabarcoding of benthic bacterial communities indicates the benthic footprint of salmon aquaculture. Marine Pollution Bulletin 127: ASC STEI N FLESA AQU A KOM PE TAN SE AS 19

20 TC/KC/JP Annex. Total Steinflesa l ist of macro - and meiofauna l taxa and their relative frequencies in the edn A datasets of each station. The ecological groups (EG) AM BI and N SI are indicated if available, otherwise N A is marked. The pollution indicator species classified in EG 5 are marked in red. The taxa are ranked according to their relative frequencies within the total edn A dataset of either COI or 18S marker. COI marker - Steinflesa Ecological group Relative frequency Taxon AMBI NSI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 ASC Ref Paramphinome jeffreysii 3 3 NA 49,2 0,1 67,3 0,3 Ophryotrocha scutellus 4 4 3,1 35 <0,1 <0,1 NA Ophryotrocha craigsmithi ,9 12,3 NA 0,1 NA Ophryotrocha cyclops ,9 3,3 <0,1 NA NA Nereimyra woodsholea 3 NA NA NA 75,1 NA <0,1 Obelia geniculata 2 NA NA NA 0,2 0,6 71,1 Parougia eliasoni NA NA NA NA 14,4 NA NA Obelia dichotoma 2 NA NA NA NA <0,1 23,2 Pholoe baltica 1 3 <0,1 <0,1 <0,1 19 <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 <0,1 NA 1,2 9 0,7 Abra nitida 3 3 NA NA 4,3 0,1 NA Cephalothrix iwatai 3 NA NA NA 4 <0,1 NA Harmothoe imbricata 2 NA NA NA NA NA 2,5 Corymorpha nutans 1 NA NA <0,1 NA NA 1,2 Scutopus ventrolineatus 1 2 NA NA <0,1 1,4 NA Spatangus purpureus 1 1 NA NA 0,5 <0,1 NA Grania pusilla NA NA NA NA NA 1,1 <0,1 Orthopyxis integra 1 NA NA NA NA NA 0,7 Paradiopatra quadricuspis 1 1 NA NA <0,1 0,6 <0,1 Pectinaria koreni 4 4 NA 0,1 NA NA NA Pectinaria auricoma 1 2 NA NA NA 0,4 NA Leuckartiara octona 1 NA NA <0,1 NA 0,2 NA Retusa umbilicata 2 NA NA NA 0,1 NA NA Yoldiella frigida 1 3 NA NA NA <0,1 0,1 Nereimyra punctata 3 4 NA NA NA NA 0,1 Myxine glutinosa NA NA NA NA NA NA <0,1 Phyllodoce groenlandica 4 3 NA NA NA <0,1 NA Arenicola marina 3 NA NA <0,1 NA NA <0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 NA <0,1 NA NA NA Nothria conchylega 2 NA NA NA NA NA <0,1 Ophryotrocha maculata NA NA NA <0,1 NA <0,1 NA Phylo norvegica 1 NA NA NA NA <0,1 NA Laonice cirrata 3 1 NA NA NA NA <0,1 i ASC STEI N FLESA AQU A KOM PE TAN SE AS 20

21 TC/KC/JP Melinna albicincta 3 2 N A N A N A N A <0,1 Neoleanira tetragona 2 3 N A N A N A N A <0,1 Barantolla americana 1 N A N A <0,1 N A N A N A Chaetoderma nitidulum 2 2 <0,1 N A N A N A N A Chaetozone setosa 4 4 <0,1 N A N A N A N A Galathowenia oculata 3 3 N A N A N A <0,1 N A Ophelina acuminata 1 3 <0,1 N A N A N A N A Scalibregma sp. 3 N A N A <0,1 N A N A N A 18S V1V2 marker - Steinflesa Ecological group Relative frequency Taxon AMBI N SI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 ASC Ref Mytilus edulis 3 4 N A 79,5 N A N A N A Pholoe baltica 1 3 N A N A 0,4 36,7 0,2 Phyllodocida undet. N A 2 N A 0,1 2,5 26,4 38,1 Lumbrineris funchalensis 2 N A N A N A 4,5 28,7 N A Corymorpha nutans 1 N A 1,3 13,9 N A <0,1 0,3 Sphaerodoridium fauchaldi 2 N A N A N A N A 2,5 9,5 Arca sp. 1 N A N A N A 0,2 N A 27,1 Amphiporus lactifloreus 3 N A N A N A N A 2,4 N A Eunicida undet. N A N A N A 0,1 0,8 1,4 N A Capitellida undet ,2 0,9 9,3 0,1 1,2 Onchnesoma steenstrupii 1 1 N A N A N A 0,1 6,6 Anticoma sp. 3 N A N A 2 N A N A N A Holothuroidea undet. 1 N A 1,3 <0,1 7,9 <0,1 6,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,4 0,9 N A 0,3 <0,1 Sabatieria pulchra 5 N A 2 1,3 N A N A N A Amphipholis squamata 1 1 N A N A N A 0,6 N A Gyptis golikovi 2 2 N A N A 13,6 0,3 N A Cylichna gelida 2 N A N A N A 36,1 N A N A Tubificoides benedii 5 N A N A 0,8 N A N A N A Thyasira sarsi ,7 0,2 0,4 <0,1 0,1 Mugga wahrbergi 2 2 9,2 <0,1 3,8 0,1 0,8 Terebellida undet. N A N A N A N A 0,2 <0,1 2,5 Capitella sp ,7 0,1 0,2 N A N A Phascolion strombus 1 2 N A N A N A 0,1 1,1 Pseudomystides limbata 2 N A N A N A N A N A 1,8 Lepidonotus sublevis 2 N A 0,2 <0,1 0,4 N A 1,6 Opheliidae undet. N A N A N A N A 1,7 0,1 0,1 Crustacea undet. 1 N A N A N A N A N A 0,8 Paradiopatra fiordica 1 3 N A 0,2 N A N A N A Ciona intestinalis 3 N A 4,2 N A 1,5 N A 0,2 ii ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 21

22 TC/KC/JP Nucula sulcata 1 2 N A N A 6,6 N A N A Ascidiella sp. 3 N A 0,9 <0,1 1,9 N A 0,3 Hiatella arctica 1 1 0,2 <0,1 N A N A 0,5 Spionida undet ,8 <0,1 N A <0,1 0,1 Yoldiella orcia 1 1 N A N A N A <0,1 0,4 Abra nitida 3 3 N A N A 3,6 N A N A Polychaeta undet. N A N A 3,5 N A N A N A N A Spiophanes kroyeri 3 3 N A N A 0,4 N A 0,2 Pherusa plumosa 3 3 N A N A N A <0,1 0,1 Ophiuroidea undet. 2 2 N A N A 1,1 <0,1 <0,1 Retusa sp. N A N A N A N A 1,5 N A N A Sige fusigera 3 3 N A N A N A N A 0,1 Lobata undet. N A N A N A N A 1,1 N A N A Neoleanira tetragona 2 3 N A N A N A N A 0,1 Ectopleura larynx 1 N A N A N A N A <0,1 <0,1 Sabellides octocirrata 2 1 0,4 <0,1 N A N A N A Ampharete finmarchica 1 2 N A N A N A < 0,1 N A Bougainvillia sp. N A N A N A <0,1 N A N A <0,1 Leuckartiara octona 1 N A N A N A N A N A <0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 N A <0,1 N A N A N A Scalibregma sp. inflatum 3 3 N A <0,1 N A N A N A Apistobranchus typicus 1 N A N A N A N A <0,1 N A Cephalothrix filiformis 3 N A N A N A N A N A <0,1 Lucinoma borealis 1 1 N A <0,1 N A N A N A Meganyctiphanes norvegica 1 N A N A N A N A N A <0,1 Micrura sp. 1 N A N A N A N A N A <0,1 Paradoneis sp. 3 N A N A N A 0,2 N A N A iii ASC STEI N FLE SA AQU A KOM PE TAN SE AS 22

23 Vedlegg B Kobberanalyser Kystlab AS Avdeling Namdal Aqua Kompetanse AS Havbruksparken, Storlavika FLATANGER TEST070 Dato: Prøve ID: N ver 1 ANALYSERESULTATER Prøvemottak: Analyseperiode: Prøvetaker: Vidar Strøm Sedimenter fra saltvann Tatt ut: Merket: Bjørgan Referanse: Bjø-1 Parameter Metode Resultat Enhet Måleusikkerhet Kobber Intern /ISO mg/kg TS ±3,40 *Finstoff (<63µ) DIN ,1 % *Sand ( µm) DIN % *Grus (>2000 µm) DIN <1 % Sedimenter fra saltvann Tatt ut: Merket: Bjørgan Referanse: Bjø-2 Parameter Metode Resultat Enhet Måleusikkerhet Kobber Intern /ISO mg/kg TS ±12,00 *Finstoff (<63µ) DIN % *Sand ( µm) DIN % *Grus (>2000 µm) DIN <1 % Sedimenter fra saltvann Tatt ut: Merket: Bjørgan Referanse: Bjø-3 Parameter Metode Resultat Enhet Måleusikkerhet Kobber Intern /ISO mg/kg TS ±2,10 *Finstoff (<63µ) DIN % *Sand ( µm) DIN % *Grus (>2000 µm) DIN % Sedimenter fra saltvann Tatt ut: Merket: Bjørgan Referanse: Bjø-4 Parameter Metode Resultat Enhet Måleusikkerhet Kobber Intern /ISO mg/kg TS ±5,00 *Finstoff (<63µ) DIN % *Sand ( µm) DIN % *Grus (>2000 µm) DIN % Sedimenter fra saltvann Tatt ut: Merket: Bjørgan Referanse: Bjø-5 Laboratoriet er ikke akkreditert for prøvetaking eller vurdering og fortolking av prøveresultater. Måleusikkerhet fåes ved henvendelse laboratoriet. Resultatet gjelder kun mottatt prøve. Rapporten skal ikke gjengis i utdrag uten vår skriftlige godkjenning. Side 1 av 2 Postadresse Postboks namdal@kystlab.no 7801 Namsos Telefon: Org.nr.: NO: MVA ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 23

24 Parameter Metode Resultat Enhet Måleusikkerhet Kobber Intern /ISO mg/kg TS ±2,10 *Finstoff (<63µ) DIN % *Sand ( µm) DIN % *Grus (>2000 µm) DIN % *) Laboratoriet er ikke akkreditert for denne analysen < betyr: Mindre enn Dato: Prøve ID: N ver 1 Med hilsen Kystlab AS Johan Ahlin Avdelingsleder Namdal Kopi til Kai ( ) Laboratoriet er ikke akkreditert for prøvetaking eller vurdering og fortolking av prøveresultater. Måleusikkerhet fåes ved henvendelse laboratoriet. Resultatet gjelder kun mottatt prøve. Rapporten skal ikke gjengis i utdrag uten vår skriftlige godkjenning. Postadresse Postboks namdal@kystlab.no 7801 Namsos Telefon: Side 2 av 2 Org.nr.: NO: MVA ASC STEINFLESA AQUA KOMPETANSE AS 24