ASC-undersøkelse ved Svinvær i Rødøy kommune, mai 2018

Transkript

1 2018 ASC-undersøkelse ved Svinvær i Rødøy kommune, mai 2018 Nova Sea AS 2018 Etter ASC Salmon Standard v1.1 AQUA KOMPETANSE AS ASC SVINVÆR

2 Kriterium Aqua Kompetanse AS Storlavika Flatanger Mobil: E-post: post@aqua-kompetanse.no Internett: Bankgiro: Org. Nr.: Rapportens tittel: ASC-undersøkelse ved Svinvær i Rødøy kommune, mai 2018 Forfatter: Christine Klykken Feltdato: Toktleder: Kristine Brokke Rapportdato: Rapportnummer: ASC Antall sider uten vedlegg: 11 Antall sider totalt: 28 Oppdragsgiver: Nova Sea AS Kontaktperson: Samuel Anderson Lokalitet: Svinvær Lokalitetsnummer: Driftsleder: Viktor Arntsen Koordinater: N Ø Bakgrunn for undersøkelse: ASC sertifisering Stasjoner Fylke: Nordland Kommune: Rødøy Innenfor AZE MTB tillatelse: 6240 tonn Antall merder: 14 Merdomkrets: 120m Utenfor AZE ASC1 ASC2 ASC3 ASC , Bestått Ikke bestått H : 3,23 ± 0,09 AMBI: 2,93 ± 0,11 H : 3,23 ± 0,19 AMBI: 3,05 ± 0, ,29 Rapportansvarlig: Kvalitetssikrer: Christine Klykken Vidar Strøm Emneord: Miljøanalyse; sediment; bunndyrsanalyser; redoks; prøvetaking; ASC; Salmon Standard ID Rapporten er tilgjengelig ved forespørsel 2018 Aqua Kompetanse AS. Kopiering av rapporten kan kun skje i sin helhet. Dersom deler av rapporten (konklusjoner, figurer, tabeller, bilder eller annen gjengivelse) er ønskelig, er dette kun tillatt etter skriftlig samtykke fra Aqua Kompetanse AS ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 2

3 Innholdsfortegnelse 1. Materiale og metode Undersøkelsesområde Stasjonsplassering Innsamlingsmetode edna Kobberanalyser Redokspotensial Vurdering etter ASC Salmon Standard Kriterium Kriterium Kriterium Kriterium Resultater Redokspotensial og ASC Kriterium Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Kobberanalyse og ASC Kriterium Referanser Vedlegg A edna-rapport ID-Gene Vedlegg B Kobberanalyser Akvaplan-niva ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 3

4 1. Materiale og metode Aqua Kompetanse AS har gjennomført feltarbeid for å innhente prøvemateriale for oppdragsgiver Nova Sea AS. Prøvetaking og stasjonsplassering ble utført i henhold til metodikk beskrevet i ASC Salmon Standard V 1.1, NS-EN ISO 16665:2013 og NS-EN ISO 5667:2004 av Kristine Brokke fra Aqua Kompetanse AS den ID-Gene har stått for genetiske analyser (edna) av sedimentprøvene, og beregning av diversitetsindekser basert på RNA-markøren 18S V1V2. ALS Laboratory Group (underleverandør av Akvaplanniva AS) har stått for kobberanalyser. 1.1 Undersøkelsesområde Anlegget ligger nord for Svinvær og sør for Bolga i Bolgfjorden, ved utløpet til Skarsfjorden og Meløyfjorden (Figur 1). Sørvestsiden av anlegget er fortøyd opp mot land, mens det på nordsiden av anlegget skrår dypere ut mot en fordypning på 135 meters dybde. Sedimentet under anlegget består hovedsakelig av skjellsand og sand, ispedd en god del stein (Brokke, 2017). Figur 1: Oversiktskart som viser anleggsplassering og undersøkelsesområdet. Målestokk 1: Kilde: Fiskeridirektoratets karttjeneste. 1.2 Stasjonsplassering ASC definerer et område rundt anlegget hvor det er tillatt med en viss påvirkning fra oppdrettsvirksomheten. Dette området kalles AZE Allowable Zone of Effect -, og er definert i ASC Salmon Standard V 1.1 som 30 meter fra merd. Ved prøvetaking skal det legges stasjoner både innenfor og utenfor AZE, fortrinnsvis èn stasjon med hovedstrømretningen og èn mot hovedstrømretningen både innenfor og utenfor AZE. ASC1 ble plassert innenfor AZE, 25 m nordøst fra merdkant, mens ASC2 også ble plassert innenfor AZE 25 m sørvest for merdkant. ASC3 og ASC4 ble plassert hhv. 200 m nordøst og 140 m sørvest for anleggsrammen. De to referansestasjonene ble plassert 490 og 830 m vest-sørvest for anleggsrammens sørvestlige hjørne ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 4

5 Figur 2 viser stasjonenes plassering i forhold til anlegget og dominerende strømretning, mens Tabell 1 gir stasjonskoordinater og øvrig informasjon i forhold til plassering. Figur 2: Kartet viser anleggsplassering sammen med ASC-stasjoner og fortøyningsliner. Lilla pil viser orientering av kart, strømrose viser vanntransport (m 3 /m 2 /døgn) for hver 15 sektor på 50 meters dyp (spredningsdyp) og gult kryss markerer posisjon for strømmålingene i 2011 ( N, Ø; Ness, 2015). Tabell 1: Oversikt over stasjonene plassering i forhold til AZE, stasjonsdyp og avstand til anlegg. Stasjoner Koordinater Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref1 ASC ref N Ø N Ø N Ø N Ø N Ø N Ø Dybde (m) Avstand til anlegg (m) Innsamlingsmetode Makrofauna (bunndyr) og sedimentprøver ble samlet inn ved hjelp av en 0.1 m² Van Veen-grabb, og på hver prøvestasjon ble det foretatt to grabbhugg. Ved hvert hugg ble det tatt ut 2 x 5 ml overflatesediment fra ulike steder gjennom topplukene på grabben. Sedimentene ble tatt ut ved hjelp av sterile skjeer, og overført til prøverør tilsatt 10 ml Life Guard TM RNA buffer. Engangshansker ble benyttet ved prøvetaking for å unngå genetisk kontaminering. Ved hver stasjon ble det også tatt ut ml sediment til kobberanalyser. Sedimentprøvene ble fryst ned frem til analyse. Ved hver stasjon ble det også målt redokspotensial edna For metodebeskrivelse av genetiske analyser (edna) se rapport fra ID-Gene i Vedlegg A ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 5

6 1.3.2 Kobberanalyser For metodehenvisning vedrørende kobberanalyser se rapport fra Akvaplan-niva i Vedlegg B Redokspotensial E h (redokspotensial; reduksjons-oksidasjonslikevekter) ble målt i overflatesedimentet (ca. 1 cm ned) ved bruk av HQ40d multimeter og tilhørende redokselektrode (MTC101). Det ble også målt sedimenttemperatur og E obs i overflatevannet ved lokaliteten. I atmosfærisk ekvilibrert overflatevann ligger E h på rundt 400 mv, mens anoksiske vannmasser og sedimenter vil ha E h ned mot -200 mv. E h (redokspotensial) bestemmes ut fra det observerte hvilepotensialet i prøven (målt verdi; E obs) og standardpotensialet til referanseelektroden (E ref; Tabell 2): E h = E obs + E ref Tabell 2: Standardpotensiale til referanseelektrode. Tilpasset fra MTC101 brukermanual (Hach Company, 2014). Temperatur ( C) Standardpotensiale i mv (Eref) 0,0 4, ,0 9, ,0 14, ,0 19, Vurdering etter ASC Salmon Standard Aqua Kompetanse AS vurderer lokaliteten ut fra fire ASC kriteria for biodiversitet og bentiske effekter og ikketerapeutiske kjemikalier (kobber) fra akvakulturanlegg. Vurderingene fremstilles i tekst og med fargekode for bestått/ikke bestått kriterium, hhv. grønn og rød Kriterium Redokspotensialet i sedimentene utenfor AZE skal være > 0 mv Kriterium Biodiversitetsindeksene skal vise god eller høy økologisk kvalitet i sedimentet utenfor AZE. Dette bestemmes ut fra AZTI Marine Biotic Index (AMBI) eller Shannon-Wiener Index (H ), hvor AMBI skal være 3,3, eller H > 3, Kriterium Innenfor AZE skal det være 2 tallrike taksa som ikke er forurensningsindikatorer 1. Med tallrike taksa menes mer enn 100 individer per m 2, og forurensningsindikatorer er basert på økologiske grupper (EG) som beskrevet i Rygg og Norling (2013): EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer. Ved bruk av edna er det ikke mulig å kvantifisere individtall, og kriterium baseres derfor på relativ frekvens av forurensningsindikatorer mot ikkeforurensningsindikatorer. Tilstedeværelsen av flere arter tilhørende EG I IV sett opp mot lav relativ frekvens av forurensningsindikatorer vil gi en indikasjon på at kriteriet er bestått. 1 Dersom det er naturlig lave individtall (< 100 per m 2 ) i området skal dette sammenlignes med resultater fra referansestasjonen, og bedømmes ut fra hvor my lavere individtallet er innenfor AZE enn ved referansestasjonen ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 6

7 1.4.4 Kriterium Kobbernivåene i sedimentene er < 34 mg/kg i tørrvekt 2 utenfor AZE. Uttak av sedimentprøver til kobberanalyser ved felt, og resultater i foreliggende rapport gir nødvendig bevis til ASC Kriterium Dersom kobbernivåene i sedimentet utenfor AZE er > 34 mg/kg sammenlignes resultatene med verdier fra referansestasjon for å se om nivåene utenfor AZE sammenfaller med nivåene ved referansestasjon. Dersom det finnes tidligere undersøkelser med kobberuttak kan dette også brukes for å gjøre en vurdering av tilstand ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 7

8 2. Resultater 2.1 Redokspotensial og ASC Kriterium Redoksmålingene ved Svinvær viser høy Eh, og ASC3, utenfor AZE, består kriterium Ved ASC4 var det ikke tilstrekkelig med sediment til å gjennomføre elektrokjemiske målinger, derfor foreligger det ikke en vurdering av ASC4 for kriterium Tabell 4 viser resultatene fra målingene i felt (E obs) og utregnet redokspotensiale E h (E obs + E ref), i tillegg til fremstilling av bestått/ikke bestått ASC Kriterium Tabell 3: Resultater fra målinger i overflatevannet, sedimenttemperatur, og standardpotensiale Eref basert på sedimenttemperatur ved Svinvær. Eh i sjø er ikke kalkulert. Sedimenttemperatur: 7,7 C E ref sediment: 221 Sjøtemperatur: 8,9 C E obs sjø: 220 Tabell 4: Resultater fra redoksmålinger ved Svinvær. Eobs = observert hvilepotensial i prøven (målt verdi); Eh = redokspotensial, bestemt ut fra Eobs og Eref (Eh = Eobs + Eref; Tabell 2). Drift i redoksmålingene (Eobs) markeres med pil. Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref1 ASC ref2 Eobs (mv) 177,4 169,4 378,1-38,1 131,2 Eh (Eobs + Eref) 398,4 390,4 599,1-259,1 352,2 ASC Kriterium E h > 0 mv Bestått 2.2 Makrofaunaanalyser og ASC Kriteria og Ved ASC1 ble det funnet flere arter tilhørende ulike økologiske grupper, og blant artene med høyest relativ frekvens, var 92% av sekvensene ved bruk av 18S markøren en nematode (AMBI: III). Ved bruk av COImarkøren var det flest treff på to børstemarkarter, en tolerant og en ikke klassifisert, med hhv. 64 og 16% av den relative frekvensen (Tabell 5). Sett i sammenheng med at det ble funnet relativt lave frekvenser av forurensningsindikatorer, samt >20 arter, kan man anta at kriterium er oppfylt for ASC1. Ved ASC2 var 95,8% av treffene ved bruk av 18S-markøren og 76,9% av treffene for COI-markøren forurensningsindikatorer (Tabell 5). Det ble funnet 19 arter, men de øvrige artene hadde lav relativ frekvens. Sett i sammenheng med at samtlige økologiske indekser (med unntak av ISI) ga tilstandsklasse IV er det usannsynlig at stasjonen oppfyller kriterium Tabell 5: Tabellen viser identifisert makro- og meiofauna fra stasjonene innenfor AZE ved Svinvær basert på relativ frekvens for 18S V1V2 og COI markører. Økologiske grupper i AMBI og NSI indeksene er også gitt der de er tilgjengelig. Forurensningsindikatorarter (AMBI og NSI økologisk gruppe V) er markert med rødt. Tabellen er tilpasset etter Tabell 3 i rapport fra ID-Gene i Vedlegg B. ASC1 ASC2 Relativ frekvens Økologisk gruppe Relativ frekvens Økologisk gruppe Taksa 18S V1V2 COI AMBI NSI Taksa 18S V1V2 COI AMBI NSI ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 8

9 Anticoma sp. 92,1 - III ik Capitella sp. 95,8 - V III Ophryotrocha maculata Chaetozone setosa Corymorpha nutans Sabatieria pulchra Ophelina acuminata Arenicola marina Obelia geniculata Barantolla americana Nothria conchylega Capitellida indet. - 61,4 ik Ik - 16,5 IV IV 0,6 8,5 I Ik 5,9 - V Ik - 5,2 I III - 3,3 III Ik - 1,6 II Ik - 1,0 I Ik Malacoceros fuliginosus Corymorpha nutans Evadne nordmanni Ophryotrocha maculata Arenicola marina Capitellida indet. Sabatieria pulchra Obelia geniculata - 76,9 V V 0,1 9,2 I ik - 4,8 Ik Ik - 3,8 ik Ik - 3,3 III Ik 2 - V III 1,6 - V Ik - 0,9 II Ik - 0,8 II Ik Anticoma sp. 0,3 - III Ik 0,6 - V III Capitella sp. 0,5 - V III Priapulus caudatus Leuckartiara octona Balanus balanus Philine indistincta Ophryotrocha craigsmithi Ophryotrocha cyclops Ophryotrocha scutellus Euspira montagui Ectopleura larynx Heterobranchia indet. Phyllodocida indet. Paramphinome jeffreysii Ophryotrocha scutellus - 0,3 III III - 0,3 IV IV - 0,4 III III Pholoe baltica - 0,2 I III - 0,3 I Ik - 0,3 ik Ik - 0,2 II II - 0,2 IV IV Nothria conchylega Barantolla americana Ophryotrocha craigsmithi Bougainvillia sperciliaris - 0,1 II Ik - 0,1 I Ik - 0,1 IV IV - 0,1 IV IV - 0,2 IV IV Eteona longa 0,1 - III IV - 0,2 IV IV - 0,1 II II - 0,1 I ik 0,1 - ik Ik 0,1 - ik II Paradiopatra fiordica 0,1 - I III * Økologiske grupper: EG I = sensitive arter; EG II = nøytrale arter; EG III = tolerante arter; EG IV = opportunistiske arter; EG V = forurensningsindikatorer (Rygg og Norling, 2013). Ik = ikke kjent gruppe ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 9

10 Stasjonene utenfor AZE, ASC3 og ASC4, hadde hhv. 36 og 28 arter med relativ frekvens > 0,1. Ved ASC3 var det forurensningsindikatoren Capitellida indet. som hadde høyest frekvens ved bruk av 18S-markøren, mens den tolerante børstemarken Galathowenia oculata hadde flest treff på COI-markøren. Mens ved ASC4 var forurensningsindikatorene tilstede med lav relativ frekvens, og også her dominerte den tolerante børstemarken Galathowenia oculata (Tabell 3 i Vedlegg A). ASC3 og ASC4 hadde begge H > 3,0 og AMBI 3,3, og består derfor kriterium Tabell 6: Resultater fra edna-analyser, med antall arter med relativ frekvens 0,1 ved hver stasjon, samt indeks-score for Shannon-Wiener (H ) og AMBI, og resultater for ASC kriterium og ved Svinvær. Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref1 ASC ref2 Antall arter Shannon-Wiener (H ) 2,46 ± 0,17 1,67 ± 0,43 3,23 ± 0,09 3,23 ± 0,19 3,46 ± 0,12 3,19 ± 0,15 ASC Kriterium H > 3,0 Bestått Bestått AMBI 3,46 ± 0,21 4,66 ± 0,48 2,93 ± 0,11 3,05 ± 0,11 2,91 ± 0,14 3,03 ± 0,05 ASC Kriterium AMBI 3,3 ASC Kriterium Bestått Ikke bestått Bestått Bestått 2.3 Kobberanalyse og ASC Kriterium Det var mye stein i prøvetakingsområdet, noe som resulterte i at det ved ASC4 ikke var mulig å ta ut tilstrekkelig materiale til å utføre analyser av kobber. Det foreligger derfor kun kobberanalyser fra de øvrige stasjonene (Nb, i vedlegg B er det ført feil stasjonsnavn, og det ser derfor ut til at det foreligger analyser ved stasjon ASC4, selv om dette er ASC ref1.) Analysene av kobber viser lave nivå, bakgrunnsnivå etter tilstandsklassifisering gitt i M-608, for alle stasjonene. Utenfor AZE var nivået av kobber <34 mg/kg, og Svinvær består derfor ASC kriterium for ASC3. Tabell 7: Resultater fra kobberanalysene som ble utført ved Svinvær, samt resultat for ASC kriterium Stasjoner Innenfor AZE Utenfor AZE Referansestasjon ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC ref1 ASC ref 2 Cu mg/kg 9,66 14,6 5,29-9,01 11,6 ASC Kriterium < 34 mg CU/kg Bestått ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 10

11 Referanser Aquaculture Stewardship Council (2017) ASC Salmon Standard V1.1. Brokke, K.E. (2017) B-undersøkelse ved Svinvær i Rødøy kommune, august Rapportnummer B levert av Aqua Kompetanse AS. Hach Company (2014) User Manual gel filled ORP/Redox Probe: Model MTC10101, MTC10103, MTC10105, MTC10110, MTC10115 or MTC doc Edition 4. Ness, J. (2015) Strømundersøkelse Svinvær i Rødøy kommune juli Levert av LetSea AS Norsk Standard (2004). Vannundersøkelse. Prøvetaking. Del 19: Veiledning i sedimentprøvetaking i marine områder (ISO 5667:2004). Standard Norge. NS-EN ISO : Norsk Standard (2013) Vannundersøkelse. Retningslinjer for kvantitativ prøvetaking og prøvebehandling av marin bløtbunnsfauna (ISO : 2014). Standard Norge. NS-EN ISO 16665:2013. Rygg, B. & Norling, K. (2013) Norwegian Sensitivity Index (NSI) for marine macro invertebrates, and an update of Indicator Species Index (ISI). NIVA rapport SNO ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 11

12 Vedlegg A edna-rapport ID-Gene ASC SVINVÆR AQUA KOMPETANSE AS 12

13 JP/TC/KC Environmental DNA-based bioassessment of salmon farm impact on benthic biodiversity - Svinvær Report for Aqua Kompetanse AS (Kristine Brokke), prepared by Prof. Jan Pawlowski, Dr. Tristan Cordier, and Mgr. Kristina Cermakova (University of Geneva & ID-GENE ecodiagnostics TM ) Summary The environmental impact of the Svinvær farm on benthic diversity was assessed as part of ASC survey using ID-Gene ecodiagnostics TM sedimentary DNA bioassessment test. The values of biotic indices predicted using 18S marker show moderate ecological status for station ASC 1 and bad or moderate status for station ASC 2. Stations ASC 3, ASC 4 and ASC Ref.2 have good or moderate status. The status of ASC Ref.1 is good. The taxonomic lists of zoobenthos identified in edna datasets indicate the presence of non-pollution indicator species in all stations. This suggests that Svinvær site complies with the criteria and of the ASC Salmon Standard. Samples 24 samples collected by Aqua Kompetanse AS were sent to ID-Gene ecodiagnostics TM laboratory in May 28 th, The samples were collected at 6 ASC stations in Svinvær site (2 grabs per station, 2 replicates per grab). DNA extraction, PCR amplification and High-throughput sequencing Environmental DNA (edna) was extracted from each sediment sample and two marker regions were amplified using PCR: a nuclear (18S V1V2) marker targeting all eukaryotes and a mitochondrial (COI) marker targeting principally zoobenthos. The paired-end sequencing on a MiSeq instrument yielded high quality reads for 18S marker and reads for COI marker. The sequencing depth, i.e. the number of sequences per sample, averages ± for 18S and ± for COI. 1

14 JP/TC/KC Biotic indices The values of six biotic indices (AMBI, NSI, NQI 1, ISI, Shannon, and neqr) have been predicted from the 18S V1V2 edna sequence data using our predictive model trained on others salmon farms in Norway, for which the ecological status of samples was known (Cordier et al., 2017, Cordier et al., 2018). The biotic indices values were predicted for each replicate and the four values (2 replicates x 2 grabs per station) were averaged into a final predicted value for each station (Table 2). Table 1. Threshold values of different indices corresponding to the ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad) Ecological status Very good Good Moderate Bad Very bad Shannon 4,8-5,7 3,0-4,8 1,9-3,0 0,9-1,9 0-0,9 AMBI 0-1,2 1,2-3,3 3,3-4,3 4,3-5,5 5,5-6 NSI NQI1 0,82-0,9 0,63-0,82 0,49-0,63 0,31-0,49 0-0,31 ISI 9, < 4.5 neqr 0, ,2 Table 2. The values of AMBI, NSI, ISI, NQI1, Shannon and neqr predicted from edna data. The colours correspond to ecological status (blue = very good, green = good, yellow = moderate, orange = bad, red = very bad). The ± sign indicates standard deviation. Svinvær ASC1 ASC2 ASC3 ASC4 ASC Ref. 1 ASC Ref. 2 AMBI 3.46± ± ± ± ± ±0.05 NSI 16.44± ± ± ± ± ±0.28 ISI 7± ± ± ± ± ±0.32 NQI1 0.59± ± ± ± ± ±0.01 Shannon 2.46± ± ± ± ± ±0.15 neqr 0.52± ± ± ± ± ±0.03 2

15 JP/TC/KC Taxonomic composition Zoobenthos list was created for each station based on 18S and COI edna sequences assigned to macro- and meiofauna. In Table 3, the taxa are listed with their relative frequencies within the 18S and COI edna datasets of each station separately. AMBI and NSI ecological groups, as defined in the reference paper of Rygg and Norling (2013), are also indicated. The zoobenthos lists are summarized in annex, with taxa ranked according to their relative frequencies within the total edna datasets of COI and 18S markers. Table 3. List of macro- and meiofaunal taxa and their relative frequencies in the edna datasets of each station for 18S and COI markers. The ecological groups (EG) AMBI and NSI are indicated if available, otherwise NA is marked. The pollution indicator species classified in EG 5 are marked in red. Svinvær ASC 1 (COI) Svinvær ASC 1 (18S) Taxon Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Ophryotrocha maculata NA NA 61,4 Anticoma sp. 3 NA 92,1 Chaetozone setosa ,5 Sabatieria pulchra 5 NA 5,9 Corymorpha nutans 1 NA 8,5 Capitellida undet ,6 Ophelina acuminata 1 3 5,2 Corymorpha nutans 1 NA 0,6 Arenicola marina 3 NA 3,3 Capitella sp ,5 Obelia geniculata 2 NA 1,6 Heterobranchia undet. NA NA 0,1 Barantolla americana 1 NA 1 Phyllodocida undet. NA 2 0,1 Nothria conchylega 2 NA 0,8 Nothria sp. 2 NA <0,1 Priapulus caudatus 3 3 0,4 Priapulus caudatus 3 3 <0,1 Leuckartiara octona 1 NA 0,3 Polychaeta undet. NA NA <0,1 Balanus balanus NA NA 0,3 Littorina littorea 2 NA <0,1 Philine indistincta 2 2 0,2 Ciona intestinalis 3 NA <0,1 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 0,2 Ascidiella sp. 3 NA <0,1 Ophryotrocha cyclops 4 4 0,2 Ophryotrocha scutellus 4 4 0,1 Euspira montagui 2 2 0,1 Ectopleura larynx 1 NA 0,1 3

16 JP/TC/KC Svinvær ASC 2 (COI) Svinvær ASC 2 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Malacoceros fuliginosus ,9 Capitella sp ,8 Corymorpha nutans 1 NA 9,2 Capitellida undet Evadne nordmanni NA NA 4,8 Sabatieria pulchra 5 NA 1,6 Ophryotrocha maculata NA NA 3,8 Anticoma sp. 3 NA 0,3 Arenicola marina 3 NA 3,3 Eteone longa 3 4 0,1 Obelia geniculata 2 NA 0,9 Paradiopatra fiordica 1 3 0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,3 Corymorpha nutans 1 NA 0,1 Ophryotrocha scutellus 4 4 0,3 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Pholoe baltica 1 3 0,2 Phyllodocida undet. NA 2 <0,1 Nothria conchylega 2 NA 0,1 Littorina littorea 2 NA <0,1 Barantolla americana 1 NA 0,1 Mytilus edulis 3 4 <0,1 Ophryotrocha craigsmithi 4 4 0,1 Ciona intestinalis 3 NA <0,1 Bougainvillia superciliaris NA NA 0,1 Modiolus modiolus 1 1 <0,1 Arenicola marina 3 NA <0,1 4

17 JP/TC/KC Svinvær ASC 3 (COI) Svinvær ASC 3 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Galathowenia oculata ,8 Capitellida undet ,8 Barantolla americana 1 NA 8,7 Sabatieria pulchra 5 NA 17,5 Corymorpha nutans 1 NA 7,7 Anticoma sp. 3 NA 12,1 Ophelina acuminata 1 3 4,4 Leptocythere lacertosa 3 NA 11,4 Pholoe baltica Corymorpha nutans 1 NA 9,6 Glycera capitata 2 1 2,3 Thyasira sarsi Ophryotrocha maculata NA NA 1,8 Ampharete finmarchica Obelia geniculata 2 NA 1,8 Heterobranchia undet. NA NA 2,2 Nothria conchylega 2 NA 0,5 Nematoda undet. 3 NA 1,8 Mugga wahrbergi 2 2 0,3 Mytilus edulis 3 4 1,8 Nucula nucleus 1 NA 0,2 Phyllodocida undet. NA 2 1,3 Priapulus caudatus 3 3 0,1 Myriochele sp ,1 Nereimyra woodsholea 3 NA 0,1 Hiatella arctica 1 1 1,1 Euspira montagui 2 2 0,1 Holothuroidea undet. 1 NA 0,7 Chaetozone setosa 4 4 0,1 Sabellida undet ,7 Leuckartiara octona 1 NA <0,1 Eteone longa 3 4 0,4 Evadne nordmanni NA NA <0,1 Xenoturbella westbladi 1 NA 0,4 Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 Capitella sp ,2 Nereimyra punctata 3 4 <0,1 Paradiopatra fiordica 1 3 0,2 Lepidonotus sublevis 2 NA 0,2 Littorina littorea 2 NA 0,2 Spio filicornis 3 3 0,2 5

18 JP/TC/KC Svinvær ASC 4 (COI) Svinvær ASC 4 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Galathowenia oculata Holothuroidea undet. 1 NA 63,5 Glycera capitata 2 1 4,2 Caecum glabellum 1 NA 15,4 Corymorpha nutans 1 NA 0,5 Corymorpha nutans 1 NA 7,4 Scalibregma sp. 3 NA 0,4 Heterobranchia undet. NA NA 4 Chaetozone setosa 4 4 0,3 Eteone longa 3 4 2,1 Abra nitida 3 3 0,3 Myriochele sp ,6 Nereimyra punctata 3 4 0,1 Eulalia viridis 2 NA 1,6 Pectinaria koreni 4 4 0,1 Sabatieria pulchra 5 NA 1,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 <0,1 Spionida undet ,6 Priapulus caudatus 3 3 <0,1 Polychaeta undet. NA NA 0,6 Barantolla americana 1 NA <0,1 Capitellida undet ,4 Malacoceros fuliginosus 5 5 <0,1 Phyllodocida undet. NA 2 0,3 Ophryotrocha maculata NA NA <0,1 Nematoda undet. 3 NA 0,2 Nothria conchylega 2 NA <0,1 Nucula sulcata 1 2 0,2 Ophelina acuminata 1 3 <0,1 Abra nitida 3 3 0,2 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Tharyx sp ,2 Nucula nucleus 1 NA <0,1 Philinopsis pilsbryi 1 NA 0,1 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Scalibregma sp. inflatum 3 3 0,1 Cephalothrix iwatai 3 NA <0,1 Sige fusigera 3 3 0,1 Aporrhais pespelecani 1 NA <0,1 Littorina littorea 2 NA 0,1 Phyllodoce groenlandica 4 3 <0,1 Paradoneis sp. 3 NA 0,1 Lacuna vincta 2 NA <0,1 Terebellida undet. NA NA <0,1 Laonice cirrata 3 1 <0,1 Xenoturbella westbladi 1 NA <0,1 Pholoe baltica 1 3 <0,1 Priapulus caudatus 3 3 <0,1 Thyasira sarsi 3 4 <0,1 Cossura sp. 4 NA <0,1 6

19 JP/TC/KC Svinvær ASC Ref.1 (COI) Svinvær ASC Ref.1 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Nothria conchylega 2 NA 54,8 Pholoe baltica ,3 Galathowenia oculata ,6 Retusa sp. NA NA 20,5 Paramphinome jeffreysii 3 3 8,4 Nothria sp. 2 NA 13,6 Mugga wahrbergi 2 2 5,8 Myriochele sp ,1 Retusa umbilicata 2 NA 3,4 Phyllodocida undet. NA 2 4,8 Pholoe baltica 1 3 2,1 Anobothrus gracilis 3 2 2,5 Barantolla americana 1 NA 1 Capitellida undet ,7 Corymorpha nutans 1 NA 0,4 Holothuroidea undet. 1 NA 1 Pectinaria auricoma 1 2 0,3 Golfingiida undet. 1 NA 0,8 Abra nitida 3 3 0,1 Corymorpha nutans 1 NA 0,6 Harmothoe imbricata 2 NA <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,5 Nereimyra punctata 3 4 <0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 0,5 Chaetozone setosa 4 4 <0,1 Terebellida undet. NA NA 0,4 Priapulus caudatus 3 3 <0,1 Heterobranchia undet. NA NA 0,1 Leuckartiara octona 1 NA <0,1 Priapulus caudatus 3 3 0,1 Philine quadrata 2 2 <0,1 Spionida undet ,1 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Nematoda undet. 3 NA 0,1 Nucula nucleus 1 NA <0,1 Littorina littorea 2 NA 0,1 Nereimyra woodsholea 3 NA <0,1 Neoleanira tetragona 2 3 0,1 Neoleanira tetragona 2 3 <0,1 Terebellides stroemii 2 2 0,1 Parvicardium minimum 1 1 <0,1 Spio filicornis 3 3 0,1 Nucula sulcata 1 2 <0,1 Tropidomya abbreviata 1 1 <0,1 7

20 JP/TC/KC Svinvær ASC Ref.2 (COI) Svinvær ASC Ref.2 (18S) Relative Relative Ecol. group Ecol. group frequency frequency Taxon Taxon COI 18S V1V2 AMBI NSI AMBI NSI marker marker Nothria conchylega 2 NA 73,6 Heterobranchia undet. NA NA 88,5 Pholoe baltica ,6 Phyllodocida undet. NA 2 6,6 Philine indistincta 2 2 3,4 Pholoe baltica 1 3 1,7 Priapulus caudatus 3 3 2,2 Retusa sp. NA NA 0,7 Mugga wahrbergi 2 2 1,9 Nothria sp. 2 NA 0,7 Harmothoe imbricata 2 NA 0,7 Priapulus caudatus 3 3 0,5 Nereimyra punctata 3 4 0,6 Lepidonotus sublevis 2 NA 0,3 Leuckartiara octona 1 NA 0,3 Paraonidae undet. 2 NA 0,3 Philine quadrata 2 2 0,3 Terebellides stroemii 2 2 0,2 Retusa umbilicata 2 NA 0,2 Holothuroidea undet. 1 NA 0,1 Abra nitida 3 3 0,1 Mugga wahrbergi 2 2 0,1 Nucula nucleus 1 NA 0,1 Capitellida undet ,1 Barantolla americana 1 NA <0,1 Melinna albicincta 3 2 0,1 Glycera capitata 2 1 <0,1 Sphaerosyllis sp. 1 NA 0,1 Corymorpha nutans 1 NA <0,1 Polychaeta undet. NA NA <0,1 Chaetozone setosa 4 4 <0,1 Sabatieria pulchra 5 NA <0,1 Galathowenia oculata 3 3 <0,1 Terebellida undet. NA NA <0,1 Obelia geniculata 2 NA <0,1 Nucula sulcata 1 2 <0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 <0,1 Corymorpha nutans 1 NA <0,1 Nereimyra woodsholea 3 NA <0,1 Spionida undet. 3 3 <0,1 Balanus balanus NA NA <0,1 Xenoturbella westbladi 1 NA <0,1 8

21 JP/TC/KC Comments: The species lists for both markers are not the same due to the specificity of each marker. The 18S marker is known to target particularly meiofaunal groups, such as nematodes, while the COI marker shows more specificity to annelids, echinoderms, and molluscs. Both markers are complementary. The taxonomic resolution of COI marker is higher than the 18S, which means that the COI sequences can be easier identified to species level. However, the 18S marker has larger taxonomic range, which means more species can be detected in edna samples. The analysis of edna data does not allow to infer the number of specimens present in the grab samples, as provided by classical macrofauna benthic monitoring. In particular, the large-sized macrofaunal species are represented in DNA extracts only by tissue fragments, cells and their organelles, or extracellular DNA molecules. Nevertheless, it has been shown by several studies that the edna datasets have semi-quantitative character and that the relative frequency of sequences corresponds relatively well to the abundance of the taxon (Lejzerowicz et al. 2015). References Cordier T, Esling P, Lejzerowicz F, Visco J, Ouadahi A, Martins C, Cedhagen T, Pawlowski J. (2017) Predicting the Ecological Quality Status of Marine Environments from edna Metabarcoding Data Using Supervised Machine Learning. Environ Sci Technol. 51(16): Cordier T, Forster D, Dufresne Y, Martins CIM, Stoeck T, Pawlowski J. (2018) Supervised machine learning outperforms taxonomy-based environmental DNA metabarcoding applied to biomonitoring. Mol Ecol Res (in press) Lejzerowicz F, Esling P, Pillet LL, Wilding T a., Black KD, Pawlowski J (2015) High-throughput sequencing and morphology perform equally well for benthic monitoring of marine ecosystems. Sci Rep 5:13932 Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cedhagen T, Wilding TA (2014) Environmental monitoring through protist nextgeneration sequencing metabarcoding: Assessing the impact of fish farming on benthic foraminifera communities. Mol Ecol Resour 14: Pawlowski J, Esling P, Lejzerowicz F, Cordier T, Visco JA, Martins CIM, Kvalvik A, Staven K, Cedhagen T (2016) Benthic monitoring of salmon farms in Norway using foraminiferal metabarcoding. Aquac Environ Interact 8: Pochon X, Wood SA, Keeley NB, Lejzerowicz F, Esling P, Drew J, Pawlowski J. (2015) Accurate assessment of the impact of salmon farming on benthic sediment enrichment using foraminiferal metabarcoding. Mar Pollut Bull. 100(1): Stoeck T, Kochems R, Forster D, Lejzerowicz F, Pawlowski J. (2018) Metabarcoding of benthic ciliate communities shows high potential for environmental monitoring in salmon aquaculture. Ecol. Indicators 85: Stoeck T, Frühe L, Forster D, Cordier T, Martins CIM, Pawlowski J. (2018) Environmental DNA metabarcoding of benthic bacterial communities indicates the benthic footprint of salmon aquaculture. Marine Pollution Bulletin 127:

22 JP/TC/KC Annex. Total Svinvær lists of macro- and meiofaunal taxa and their relative frequencies in the edna datasets of each station. The ecological groups (EG) AMBI and NSI are indicated if available, otherwise NA is marked. The pollution indicator species classified in EG 5 are marked in red. The taxa are ranked according to their relative frequencies within the total edna dataset of either COI or 18S marker. COI marker - Svinvær Ecological group Relative frequency Taxon AMBI NSI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 ASC Ref.1 ASC Ref.2 Nothria conchylega 2 NA 0,8 0,1 0,5 <0,1 54,8 73,6 Galathowenia oculata 3 3 NA NA 68, ,6 <0,1 Pholoe baltica 1 3 NA 0,2 3 <0,1 2,1 16,6 Paramphinome jeffreysii 3 3 NA 0,3 NA <0,1 8,4 <0,1 Mugga wahrbergi 2 2 NA NA 0,3 NA 5,8 1,9 Retusa umbilicata 2 NA NA NA NA NA 3,4 0,2 Philine indistincta 2 2 0,2 NA NA NA NA 3,4 Priapulus caudatus 3 3 0,4 NA 0,1 <0,1 <0,1 2,2 Barantolla americana 1 NA 1 0,1 8,7 <0,1 1 <0,1 Glycera capitata 2 1 NA NA 2,3 4,2 NA <0,1 Corymorpha nutans 1 NA 8,5 9,2 7,7 0,5 0,4 <0,1 Malacoceros fuliginosus 5 5 NA 76,9 <0,1 <0,1 NA NA Ophryotrocha maculata NA NA 61,4 3,8 1,8 <0,1 NA NA Harmothoe imbricata 2 NA NA NA NA NA <0,1 0,7 Nereimyra punctata 3 4 NA NA <0,1 0,1 <0,1 0,6 Pectinaria auricoma 1 2 NA NA NA NA 0,3 NA Chaetozone setosa ,5 NA 0,1 0,3 <0,1 <0,1 Abra nitida 3 3 NA NA NA 0,3 0,1 0,1 Leuckartiara octona 1 NA 0,3 NA <0,1 NA <0,1 0,3 Philine quadrata 2 2 NA NA NA NA <0,1 0,3 Ophelina acuminata 1 3 5,2 NA 4,4 <0,1 NA NA Scalibregma sp. 3 NA NA NA NA 0,4 NA NA Obelia geniculata 2 NA 1,6 0,9 1,8 <0,1 <0,1 <0,1 Arenicola marina 3 NA 3,3 3,3 NA NA NA NA Nucula nucleus 1 NA NA NA 0,2 <0,1 <0,1 0,1 Evadne nordmanni NA NA NA 4,8 <0,1 NA NA NA Pectinaria koreni 4 4 NA NA NA 0,1 NA NA Nereimyra woodsholea 3 NA NA NA 0,1 NA <0,1 <0,1 Balanus balanus NA NA 0,3 NA NA NA NA <0,1 Ophryotrocha scutellus 4 4 0,1 0,3 NA NA NA NA Euspira montagui 2 2 0,1 NA 0,1 NA NA NA Ophryotrocha craigsmithi 4 4 0,2 0,1 NA NA NA NA Cephalothrix iwatai 3 NA NA NA NA <0,1 NA NA Aporrhais pespelecani 1 NA NA NA NA <0,1 NA NA Ophryotrocha cyclops 4 4 0,2 NA NA NA NA NA Phyllodoce groenlandica 4 3 NA NA NA <0,1 NA NA i

23 JP/TC/KC Ectopleura larynx 1 NA 0,1 NA NA NA NA NA Bougainvillia superciliaris NA NA NA 0,1 NA NA NA NA Lacuna vincta 2 NA NA NA NA <0,1 NA NA Laonice cirrata 3 1 NA NA NA <0,1 NA NA Neoleanira tetragona 2 3 NA NA NA NA <0,1 NA Parvicardium minimum 1 1 NA NA NA NA <0,1 NA 18S V1V2 marker - Svinvær Ecological group Relative frequency Taxon AMBI NSI ASC 1 ASC 2 ASC 3 ASC 4 ASC Ref.1 ASC Ref.2 Capitella sp ,5 95,8 0,2 NA NA NA Anticoma sp. 3 NA 92,1 0,3 12,1 NA NA NA Heterobranchia undet. NA NA 0,1 NA 2,2 4 0,1 88,5 Holothuroidea undet. 1 NA NA NA 0,7 63,5 1 0,1 Pholoe baltica 1 3 NA <0,1 NA <0,1 47,3 1,7 Sabatieria pulchra 5 NA 5,9 1,6 17,5 1,1 NA <0,1 Capitellida undet ,6 2 26,8 0,4 1,7 0,1 Retusa sp. NA NA NA NA NA NA 20,5 0,7 Caecum glabellum 1 NA NA NA NA 15,4 NA NA Phyllodocida undet. NA 2 0,1 <0,1 1,3 0,3 4,8 6,6 Nothria sp. 2 NA <0,1 NA NA NA 13,6 0,7 Corymorpha nutans 1 NA 0,6 0,1 9,6 7,4 0,6 <0,1 Myriochele sp. 3 2 NA NA 1,1 1,6 5,1 NA Eteone longa 3 4 NA 0,1 0,4 2,1 NA NA Anobothrus gracilis 3 2 NA NA NA NA 2,5 NA Eulalia viridis 2 NA NA NA NA 1,6 NA NA Leptocythere lacertosa 3 NA NA NA 11,4 NA NA NA Priapulus caudatus 3 3 <0,1 NA NA <0,1 0,1 0,5 Golfingiida undet. 1 NA NA NA NA NA 0,8 NA Spionida undet. 3 3 NA NA NA 0,6 0,1 <0,1 Polychaeta undet. NA NA <0,1 NA NA 0,6 NA <0,1 Paradiopatra fiordica 1 3 NA 0,1 0,2 NA NA NA Thyasira sarsi 3 4 NA NA 5 <0,1 NA NA Ampharete finmarchica 1 2 NA NA 5 NA NA NA Nematoda undet. 3 NA NA NA 1,8 0,2 0,1 NA Lepidonotus sublevis 2 NA NA NA 0,2 NA NA 0,3 Mugga wahrbergi 2 2 NA NA NA NA 0,5 0,1 Paramphinome jeffreysii 3 3 NA NA NA NA 0,5 NA Littorina littorea 2 NA <0,1 <0,1 0,2 0,1 0,1 NA Terebellida undet. NA NA NA NA NA <0,1 0,4 <0,1 Paraonidae undet. 2 NA NA NA NA NA NA 0,3 Mytilus edulis 3 4 NA <0,1 1,8 NA NA NA Nucula sulcata 1 2 NA NA NA 0,2 <0,1 <0,1 Terebellides stroemii 2 2 NA NA NA NA 0,1 0,2 Abra nitida 3 3 NA NA NA 0,2 NA NA ii

24 JP/TC/KC Melinna albicincta 3 2 NA NA NA NA NA 0,1 Tharyx sp. 4 3 NA NA NA 0,2 NA NA Ciona intestinalis 3 NA <0,1 <0,1 NA NA NA NA Hiatella arctica 1 1 NA NA 1,1 NA NA NA Sphaerosyllis sp. 1 NA NA NA NA NA NA 0,1 Paradoneis sp. 3 NA NA NA NA 0,1 NA NA Xenoturbella westbladi 1 NA NA NA 0,4 <0,1 NA <0,1 Philinopsis pilsbryi 1 NA NA NA NA 0,1 NA NA Sabellida undet. 1 2 NA NA 0,7 NA NA NA Scalibregma sp. inflatum 3 3 NA NA NA 0,1 NA NA Spio filicornis 3 3 NA NA 0,2 NA 0,1 NA Modiolus modiolus 1 1 NA <0,1 NA NA NA NA Neoleanira tetragona 2 3 NA NA NA NA 0,1 NA Sige fusigera 3 3 NA NA NA 0,1 NA NA Arenicola marina 3 NA NA <0,1 NA NA NA NA Ascidiella sp. 3 NA <0,1 NA NA NA NA NA Cossura sp. 4 NA NA NA NA <0,1 NA NA Tropidomya abbreviata 1 1 NA NA NA NA <0,1 NA iii

25 Rapport Side 1 (4) N T0Z4GOT0R5 Mottatt dato Akvaplan-niva AS Utstedt Ingar H. Wasbotten Prosjekt Bestnr Framsenteret N-9296 Tromsø Norway Analyse av sediment Deres prøvenavn _ASC1 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC2 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC3 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ Deres prøvenavn _ASC4 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

26 Rapport Side 2 (4) N T0Z4GOT0R5 Deres prøvenavn _ASC5 Sediment Labnummer N Analyse Resultater Usikkerhet (±) Enhet Metode Utført Sign Tørrstoff (E) a ulev % 1 1 JIBJ Cu (Kopper) a ulev mg/kg TS 1 1 JIBJ ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

27 Rapport Side 3 (4) N T0Z4GOT0R5 "a" etter parameternavn indikerer at analysen er utført akkreditert ved ALS Laboratory Group Norway AS. "a ulev" etter parameternavn indikerer at analysen er utført akkreditert av underleverandør. "*" etter parameternavn indikerer uakkreditert analyse. Utførende laboratorium er oppgitt i tabell kalt Utf. n.d. betyr ikke påvist. n/a betyr ikke analyserbart. < betyr mindre enn. > betyr større enn. Metodespesifikasjon 1 Analyse av metaller (enkeltelementer) Metode: EPA 200.7, ISO 11885, EPA 6010 og SM 3120 Måleprinsipp: ICP AES Prøve forbehandling: Prøven homogeniseres og mineraliseres med HNO3 i en autoklav under høyt trykk og temperatur før analyse. Rapporteringsgrenser: Fe 3 mg/kg TS V 0,1 mg/kg TS Cu 0,1 mg/kg TS Co 0,1 mg/kg TS Cr 0,25 mg/kg TS Cd 0,1 mg/kg TS Be 0,01 mg/kg TS Ba 0,2 mg/kg TS As 0,5 mg/kg TS Sb 0,5 mg/kg TS Sr 0,1 mg/kg TS Ni 5 mg/kg TS Mo 0,4 mg/kg TS Hg 0,2 mg/kg TS Mn 0,5 mg/kg TS Li 1 mg/kg TS Pb 1 mg/kg TS Zn 1 mg/kg TS P 5 mg/kg TS Måleusikkerhet: 20% JIBJ Godkjenner Jan Inge Bjørnengen Utf 1 1 Ansvarlig laboratorium: ALS Laboratory Group, ALS Czech Republic s.r.o, Na Harfě 9/336, Praha, Tsjekkia Lokalisering av andre ALS laboratorier: Ceska Lipa Pardubice Bendlova 1687/7, Ceska Lipa V Raji 906, Pardubice Kontakt ALS Laboratory Group Norge, for ytterligere informasjon 1 Utførende teknisk enhet (innen ALS Laboratory Group) eller eksternt laboratorium (underleverandør). ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør

28 Rapport Side 4 (4) N T0Z4GOT0R5 Utf 1 Måleusikkerheten angis som en utvidet måleusikkerhet (etter definisjon i "Evaluation of measurement data Guide to the expression of uncertainty in measurement, JCGM 100:2008 Corrected version 2010) beregnet med en dekningsfaktor på 2 noe som gir et konfidensinterval på om lag 95%. Måleusikkerhet fra underleverandører angis ofte som en utvidet usikkerhet beregnet med dekningsfaktor 2. For ytterligere informasjon, kontakt laboratoriet. Måleusikkerhet skal være tilgjengelig for akkrediterte metoder. For visse analyser der dette ikke oppgis i rapporten, vil dette oppgis ved henvendelse til laboratoriet. Denne rapporten får kun gjengis i sin helhet, om ikke utførende laboratorium på forhånd har skriftlig godkjent annet. Resultatene gjelder bare de analyserte prøvene. Angående laboratoriets ansvar i forbindelse med oppdrag, se aktuell produktkatalog eller vår webside Den digitalt signert PDF-fil representerer den opprinnelige rapporten. Eventuelle utskrifter er å anse som kopier. ALS Laboratory Group Norway AS E-post: info.on@alsglobal.com PB 643 Skøyen, N-0214 Oslo Tel: ALS avd. ØMM-Lab Yvenveien 17, N-1715 Yven Epost: info.srp@alsglobal.com Tel: Web: Dokumentet er godkjent og digitalt undertegnet av Rapportør