Membran-proteiner (Del 3.4)



Like dokumenter
Forelesninger i BI Cellebiologi Proteinrensing - Væskekromatografi. Figure 3-43 b

Forelesninger i BI Cellebiologi. Protein struktur og funksjon - Kap. 3

TRANSPORT GJENNOM CELLEMEMBRANEN

DNA isolering Elektroforese av DNA og protein

Tor-Henning Iversen, Plantebiosenteret (PBS),Botanisk institutt,ntnu

Medisinske aspekter; rehydreringsterapi

Grunnleggende cellebiologi

Transport av ioner og næringsstoffer over cellemembranen

Transport av ioner og næringsstoffer over cellemembraner. Læringsmål IA: Beskrive ulike mekanismer for transport over membraner

4. Plasmid DNA er A. sirkulært, enkelttrådet B. lineært, dobbelttrådet C. sirkulært, dobbelttrådet og supercoiled

Cellular Energetics- Kap. 16

Enzymes make the world go around. Enzymer i dagliglivet

Universitetet i Oslo

Prøveopparbeidelse for komatografiske analyser

Forelesninger i BI Cellebiologi. Enzymer : senker aktiveringsenergien. Figure 6.13

Tor-Henning Iversen, Plantebiosenteret (PBS),Botanisk institutt,ntnu

Repetisjonsoppgaver samling 1 Cellen

FYS3710 Molekylærbiologi

FLERVALGSOPPGAVER BIOTEKNOLOGI

... Proteiner og enzymer. kofaktor. polypeptid

BIOS 1 Biologi

KJ2050 Analytisk kjemi, GK

Eksamen i emnet KJ 2053; KROMATOGRAFI

Medisin stadium 1A Geir Slupphaug, IKM. Vann Cellenes hovedbestanddel

FLERVALGSOPPGAVER - CELLEBIOLOGI

Hvordan standardisere en metode for isolering av plasmid til syntese av diabetes antigener?

Fasit til oppgavene. K-skallet L-skallet M-skallet

BIOS 2 Biologi

Hva bør man tenke på ved valg av kromatografi som analysemetodikk. Ingeborg Amundsen 4. februar 2015

Protein Sorting- Kap. 17

NORGES TEKNISK NATURVITENSKAPELIGE UNIVERSITETET

Ingen trykte eller håndskrevne hjelpemidler tillatt

BI 212- Protein Sorting - Kap. 17 Post-translasjonell modifisering og kvalitetskontroll i r-er (Del 17.6)

Behandling av Avløpsvann og bore væsker

Introduksjon til Biokjemi. Ingar Leiros, Institutt for Kjemi, UiT

WP3: Process and technological improvements. Prosjektresultater

PATENTKRAV. og en første lett kjede og en andre lett kjede, hvor første og andre lette kjeder er forskjellige.

Opptak og transport av vann og næring. Jon Atle Repstad Produktsjef Felleskjøpet Agri

ML-208, generell informasjon

KJ2053 Kromatografi Oppgave 5: Bestemmelse av molekylmasser ved hjelp av eksklusjonskromatografi/gelfiltrering (SEC) Rapport

Tema for kurset var kloning, regulering (hormonell kontroll, proteiner) og formering av planter.

KJ1042 Øving 12: Elektrolyttløsninger

Fiksering. Er det viktig?

FLERVALGSOPPGAVER - CELLEMEMBRANEN

Rapport nr. 4617/115. Metode for bestemmelse av peptidstørrelse i fiskehydrolysat, ensilasje og gelatin

Kapittel 20, introduksjon

PÅ JAKT ETTER SIGDCELLEANEMI

Flervalgsoppgaver: celleånding

Forelesninger i BI Cellebiologi. Denaturering og renaturering. Figure 3-13

FYS 3710 Biofysikk og Medisinsk Fysikk, Cellebiologi. Einar Sagstuen, Fysisk institutt, UiO

ML-208, generell informasjon

Aktiv transport og ATP-pumper (Del forts.) V-klasse proton ATPaser

Molekylære metoder i medisinsk mikrobiologi.

V A N N R E N S I N G. Tilgang til rent vann gjennom kjemisk felling.

Årsplan i naturfag 8.trinn 2017/18 Eureka 8!

SENSORVEILEDNING. Dato: Eventuelt:

Flervalgsoppgaver: Enzymer

Differensiallikninger definisjoner, eksempler og litt om løsning

ÅRSPLAN I NATURFAG 8.TRINN

Årsplan i naturfag 8.trinn 2017/18 Eureka 8!

Lourdes Hydrogenvann maskin. Vann Gården As

Flervalgsoppgaver: proteinsyntese

AVDELING FOR INGENIØRUTDANNING

FAGPLANER Breidablikk ungdomsskole. FAG: Naturfag TRINN: 9. Tema/opplegg (eksempler, forslag), ikke obligatorisk

Lab forelesning. C-vitamin. Enzymer i hverdagen

Fiksering. Er det så nøye? Ida E. Tennfjord, bioingeniør, Avdeling for Patologi, AHUS

Tissue_LC_200_V7_DSP og Tissue_HC_200_V7_DSP (brukervalidert for QIAsymphony DSP DNA Mini-sett)

Makromolekyler: type og felles egenskaper Inndeling/hovedgrupper Beskrivelse Eksempler Forenklet modell / strukturformel

Institutt for biologi Faglig kontaktperson under eksamen: Berit Johansen, EKSAMEN I: BI1001 Celle- og molekylærbiologi BOKMÅL

2. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori dsrna-duplekset har en lengde fra 8 basepar (bp) ti 30 bp.

Programmering i naturfag. Av Emil Thune

SKOLEÅR: 2016/2017. FAGLÆRERE: Jørgen Eide & Arne Christian Ringsbu Uke Tema og kompetansemål Arbeidsmåter og læringsresurser Eureka 8 TRINN: 8.

Kromatografiteori NITO kurs i kromatografi og massespektrometri Trondheim

Bioteknologi i dag muligheter for fremtiden

V A N N R E N S I N G. Tilgang til rent vann gjennom kjemisk felling.

Proteinoppbygging og nedbryting i hvete

Hensikten med forsøket er å utvikle en grunnleggende forståelse av DNA-fingeravtrykksanalyser basert på restriksjonsenzymer.

4260 Mikrobiologi. Midtprøveoppgaver. 02. oktober 2013

LEHNINGER PRINCIPLES OF BIOCHEMISTRY

Kjemiske bindinger. Som holder stoffene sammen

Laboratorieprotokoll for manuell rensing av DNA fra 0,5 ml prøve

EPO og annen bloddoping - fysiologisk effekt og analytiske utfordringer

LABORATORIEJOURNAL I TBT4110 MIKROBIOLOGI DEL 1

Vann, ph, jord og jordanalyser. Norsk Landbruksrådgivning Viken v/ Torgeir Tajet

Oncogenic Mutations Affecting Cell Proliferation

SHIFT SuperZym-6 CandidaCure 60 kapsler

EKSAMENSOPPGAVE I BI1001 CELLE- OG MOLEKYLÆRBIOLOGI

SYSMEX XS-1000i. Analyseprinsipper

NORGES TEKNISK-NATURVITENSKAPELIG UNIVERSITET Side 1 av 5 INSTITUTT FOR FYSIKK. EKSAMEN I FAG CELLEBIOLOGI 1 august 1997 Tid: kl

Oksydasjon av glukose og fettsyrer til karbondioksid Dannelse av acetylcoa og sitronsyresyklusen (forts.)

Karbon Metan Aminosyrer Isotoper NaCl. Elektronskall Redusert Sur Salter Karbohydrater. Alkoholer Oksygen Blanding Elektronparbindinger

BIOS 2 Biologi

Fasekontrast og interferens-mikroskopi

Fosfolipaser, identifikasjon av intracellulære signaliseringsdomener og integrering av multiple signal

SKOLEÅR: 2017/2018. FAGLÆRERE: Jørgen Eide, Geir Nordhaug, Trond Even Wanner, Kåre Djupesland TRINN: 8.

HARALDSVANG SKOLE Årsplan 8. trinn FAG: NATURFAG

BI 212- Protein Sorting - Kap. 17 Syntese og mål for mitokondrie- og kloroplast-proteiner (forts.)

Molekylære metoder i medisinsk mikrobiologi.

Oppgave 10 V2008 Hvilket av følgende mineraler er en viktig byggestein i kroppens beinbygning?

Transkript:

Membran-proteiner (Del 3.4) Poriner adskiller seg dramatisk fra andre integral proteiner. Finnes bl.a. i ytre membranen hos E.coli (se Figure 1-7). Poriner er med å beskytte bakterien mot toksiske forbindelser (antibiotika, proteaser), men tillater ved å danne kanaler i membranen, transport inn av næringstoffer og utskillelse av avfallstoffer. Viktig del av membran-oppbyggingen hos eukaryote celler er at polypeptid-kjeden hos noen integral proteiner ikke går inn i bilaget men er forankret til hydrokarbonkjeder inne i membranen (Figure 3-36). Dette gjelder bl.a. cytosoliske signalproteiner (Ras-protein) som er forankret gjennom farnesyl- og palmitat-grupper (Figure 3-36 b). Flere exoplasmatiske hydrolytiske proteiner er forankret i membranen i komplekse glykosylerte fosofolipider - f.eks. alkalisk fosfatase og Thy-protein som er forankret i glycosyl-phosphatidyl-inositol ; to fettsyre acyl-grupper, N- acetylglucosamin, mannose og inositol (Figure 3-36a). En annen og viktig gruppe perifere membranproteiner er fosfolipaser (bl.a. Fosfolipase A 2 ; Figure 3-37) som hydrolyserer ulike grupper i hodet på fosfolipider ved nedbrytning av gamle cellemembraner. Arbeides med av bl.a. Berit Johansen.

Membran-proteiner (Del 3.4) Figure 3-36 Figure 3-37

Forelesning Kap. 3 - knyttet til demonstrasjoner VELKOMMEN TIL PLANTEBIOSENTERET

Isolering og rensing av proteiner (Del 3.5) - detergenter På grunn av at proteinene varierer i størrelse må ulike metoder kombineres ved isolering og opprensing. Selv om proteiner varierer i aminosyresammensetning så er det i første rekke størrelsen (lengde og masse) dvs. fysiske karakterer som gir grunnlag for separasjon. Det samme gjelder nukleinsyrene. Proteinene fjernes fra cellemembranene ved bruk av detergenter eller løsninger med høye saltkonsentrasjoner. Detergentene f.eks. Triton X-100 og octylglucoside (ikke-ionisk) og SDS (ionisk) er amfifatiske molekyler som bryter opp fosfolipid-bilaget (Figure 3-38). Detergenter brukes mye som fettløselige midler og vaskemidler. Figure 3-38

Isolering og rensing av proteiner (Del 3.5) - detergenter Ved høyere konsentrasjoner danner detergenter miceller (sfæriske aggregater) med hydrofile deler pekende utover. Den kritiske micellekonsentrasjonen (CMC) er spesifikk for hver detergent (se Figure 3-39). Perifere proteiner fjernes fra membranoverflaten med løsninger med høy ionestyrke som bryter ned ionebindingene. Figure 3-39

Proteinrensing - sentrifugering Sentrifugering er første trinn ved isolering og opprensing av proteiner og er basert på ulikheter i masse dvs. vekt eller tetthet (forholdet vekt/volum). Sentrifuger kan gi opptil 600.000xg og mer enn 60.000 rpm - dvs. nok til å sedimentere masser større enn 10.000 dalton (Da). Immunoglobuliner er fra 153.000 Da (Ig G) til 1.000.0000 Da (Ig M) mens lysozym er 15.000 Da. Sentrifugering har to mål : 1. Preparativ - separere en type fra en annen og 2. Analytisk - måle fysiske egenskaper (molekylvekt, tetthet, form). Sedimentasjonskonstanten er viktig. Differensiell sentrifugering - skiller løselige proteiner fra uløselig cellemateriale (se Figure 3-40 a); pellet og supernatant Rate-Zonal sentrifugering - skiller partikler som er ulike i masse men like i form og tetthet (se Figure 3-40 b). Bruker en tetthetsgradient f.eks. sukrose. Likvekts-tetthetsgradient-sentrifugering brukes for separasjon av DNA og organeller.

Proteinrensing - sentrifugering Figure 3-40

Proteinrensing - elektroforese Elektroforese er en teknikk for separasjon/oppløsning av proteiner basert på ulikheter i ladning:masse. Benyttes til separasjon av aminosyrer og nukleotider. SDS-PAGE (SDS-polyacrylamid-elektroforese) - geler av polyacrylamid kan varieres mht porestørrelse. Små proteiner beveges raskere enn store i en slik gel i et elektrisk felt (Figure 3-41 ). Denne type elektroforese vil bli demonstrert i den praktiske oppgaven i laboratoriet. Gelene og proteinbåndene farges med Coomassie Blue (Bio-Rad Protein Assay) eller lignende fargereagenser som er spesifikke for proteiner. SDS(sodium dodecylsulfate) denaturerer proteinene til underenheter slik at alle polypetidkjedene tvinges til en utvidet konformasjon dvs. ulikheter i form elimineres og kun forskjeller i lengden dvs. massen er avgjørende for bevegelsen.

Proteinrensing - elektroforese Figure 3-41

SDS-PAGE - elektroforese (demo på lab.) SDS-PAGE (SDS-polyacrylamid-elektroforese) - geler av polyacrylamid er laget ferdig på forhånd (prosedyre gjennomgåes av Ann Cicilie Larsen og Ragnhild Lyngved). Oppgaver på lab blir : Oppbygging av elektroforese-apparatet gjennomgåes Påsetting av ukjente prøver og standard-løsninger Kjøring av elektroforese - følge bevegelsen av standarden Foreta farging av gel og forklare hvordan Coomassie-blue-fargingen virker. Bestemmelse av protein-størrelse basert på at ukjente bånd sammenlignes med standard. Demonstrere bruk av gel-doumentasjons-utstyr som automatisk analyserer gelene. Forklare mulighetene som gel-doumentasjons-utstyr representerer innen molekylærbiologi og genteknologi

Proteinrensing - 2D-elektroforese Todimensjonal-elektroforese brukes for å skille proteiner tilnærmet like i molekylvekter f.eks. et 41 kda fra et 42 kda protein. I praksis benyttes først isoelektrisk fokusering ( IEF - basert på elektrisk ladning) - fulgt av SDS-elektroforese (masse). Etter felling av celle-ekstraktet med 8M urea brukes amfolytter som danner en ph-gradient (se Figure 3-42a ). Ladete proteiner beveges til sitt isoelektriske punkt (pi). Etter IEF separeres i andre dimensjon ved bruk av SDS-elektroforese på basis av molekylvekt. Figur 3.42 b viser resultatet ; hver flekk representerer ett enkelt polypeptid som er farget eller radioaktivt merket.

Proteinrensing - 2D-elektroforese Figure 3-42 a Figure 3-42b

Proteinrensing - Væskekromatografi Væskekromatografi brukes for å skille blandinger av proteiner og nukleinsyrer. Prinsippet er at molekyler i løsning vil med ulike evne bindes til/løses fra en fast overflate.dette vil påvirke gjennomstrømnings- hastigheten til molekylene dvs. gi separasjon ned gjennom en søyle. Ulike typer : Gelfiltrerings-kromatografi Ionebytter-kromatografi Affinitets-kromatografi Gelfiltrerings-kromatografi med bæresubstans av polyacrylamid, dextran eller agarose : skiller proteiner som er ulike i masse. Små molekyler må innom hulene i bæresubstansen og forsinkes i gjennomstrømmingen (se Figure 3-43 a).

Proteinrensing - Væskekromatografi Figure 3-43a

Proteinrensing - Væskekromatografi Ionebytter-kromatografi med bæresubstans (kuler) dekket med amino(+ladning) eller karboksyl(-ladning)-grupper ved nøytral ph : skiller proteiner som er ulike i ladning (se Figure 3-43 b). Sure proteiner med negativ ladning vil stoppe opp og forsinkes i sin bevegelse på en søyle med positive ladninger - og omvendt. De sure proteinene elueres selektivt ved å benytte en gradient med økende saltkonsentrasjon (f.eks NaCl eller KCl). Ettersom konsentrasjonen øker vil saltionene erstatte den posisjon i gelkulene som proteinene midlertidig har inntatt. De svakt ladete proteiner elueres først og høyt ladete sist.